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Toma de muestras sanguíneas

Enviado por micuevas



El Médico Solicita Exámenes de Laboratorio.

Para establecer, confirmar y descartar un diagnóstico. Para control de un tratamiento

Orden Que Se Sigue De La Toma De Muestras Sanguíneas:

  1. Orden del médico.
  2. Indicaciones al paciente.
  3. Preparación del material.
  4. Anticoagulantes.
  5. Identificación del paciente.
  6. Preparación del paciente.
  7. Elección del lugar a puncionar.
  8. Obtención de la muestra.
  9. Transporte y almacenamiento.
  10. Análisis de la muestra.
  11. Estudio del resultado.
  12. Entrega oportuna del resultado.
  13. Interpretación del médico.
  14. Tratamiento.

Efectos Del Ejercicio En Componentes Séricos.

  • Componente % ­
  • Componente % ¯
  • ALT (TGP) 41
  • Lípidos Totales 12
  • AST (TGO) 31
  • Hierro 11
  • Creatinina 17
  • Potasio 8
  • Fósforo 12
  • Bilirrubina 4
  • Ac. Úrico 4
  • Albúmina 4

Variación En Componentes Séricos En Fumadores.

  • Componente % de cambio
  • Colesterol 4
  • Glucosa 10
  • Triglicéridos 20

Tubo Con Tapón Gris Claro.

Contiene aditivos para preservar la glucosa.

Tubo con fluoruro de sodio.

  • Tapón gris claro.
  • Anticoagulante:
  • Oxalato de potasio para preservar muestra del plasma.
  • Conservar la glucosa hasta por 5 días.

Anticoagulantes.

EDTA

Ca++

Hematológica

Citrato de Sodio

Ca++

Coagulación

Oxalato de Sodio

Ca++

Coagulación

Heparina

Trombina

Química Clínica y Determinación de Gases Arteriales.

Tubos Con Yodo Acetato.

Para pruebas de glucosa.

Dado que el yodo acetato no es un anticoagulante, la sangre se coagula dando lugar a la presencia del suero. Proporciona cifras precisas de glucosa hasta por 24 horas.

Punción.

(Puede ser venosa, cutánea, arterial)

Punción Capilar.

Desventajas.

  • Se obtiene poca cantidad de muestra.
  • Riesgo de hemólisis y coagulación.

Ventajas.

  • De sencilla ejecución.
  • Adecuada para pacientes:
  • Pediátricos.
  • Obesos.
  • Quemados.
  • Geriátricos.

Aislamiento Estricto.

  • Cuarto privado: Mantener la puerta cerrada.
  • Bata y cubrebocas: serán usados por todas las personas que entren al cuarto.
  • Manos: deben lavarse al entrar y salir del cuarto.
  • Guantes: deben usarlos todas las personas que entren al cuarto.

Enfermedades que Requieren Aislamiento Estricto.

  • Antrax.
  • Difteria.
  • Herpes simple.
  • Herpes soster diseminado.
  • Infecciones de piel por estafilococo aureus.
  • Rabia.
  • Rubéola.
  • Varicela.
  • SIDA.

Foto – Labilidad.

  • Vitaminas "A" y "B6".
  • Beta carotenos.
  • Porfinas.
  • Bilirrubinas.

En la toma de muestras para gases arteriales la heparina no actúa solo como anticoagulante sino que además llena los espacios de aire entre la jeringa y la aguja.

Algunas Drogas que Incrementan la Actividad de la CK.

  • Ampicilina.
  • Analgésicos.
  • Clinamicina.
  • Diuréticos.
  • Lidocaína.
  • Morfina.

Bilirrubinas.

  • Muestras con hemólisis no son aceptables, esto causa valores o bajos en la reacción de diazotación.
  • La luz solar produce una disminución de hasta 50% por hora.

Lipasa.

No aceptar muestras hemolizadas, ya que la hemoglobina inhibe la actividad de la lipasa.

La deshidrogenasa se inactiva a 4 – 6ºC. Por lo que no deben refrigerarse.

Pruebas Afectadas por Estasis Venosa.

  • Fosfatasa alcalina.
  • AST (GOT).
  • Bilirrubina.
  • Calcio.
  • T3
  • T4
  • Triglicéridos.
  • Proteínas.

GPT Estos componentes

están presentes en

LDH grandes cantidades

K+ en los glóbulos rojos por

Fosfatasa lo que la hemólisis

Ácida elevará significativamente los resultados

Rechazo De Muestras Por:

  • Identificación inadecuada.
  • Volumen inadecuado (BH, TP)
  • Tubos inadecuados.
  • Hemólisis.
  • Transporte inadecuado.

Sueros ictéricos

  • Interferentes Turbidez

Sueros lipémicos

  • Desconocimiento de la procedencia de una muestra.

Por inhibir una enzima.

La hemoglobina Por interferir en una reacción

puede interferir como diazotación de bilirrubina

directamente en O por causar cantidad

una importante de color e

determinación interferir con ello en una

química determinación

colorimétrica

Toda manipulación prostática causa elevación temporal mesurable de fosfatasa ácida.

Las muestras para esta determinación deberán tomarse después de 24 a 48 horas después de la manipulación.

Variación en componentes séricos con relación a la postura

Componente

Incremento promedio %

ALT (TGP)

7

AST (TGO)

5

Fosfatasa Alcalina

7

Colesterol

7

Triglicéridos

6

Amilasa

6

Albúmina

9

La sensación visual que apreciamos como color verde es producido por luz con una longitud de onda de 490 (mm ). La unidad de longitud de la onda es el milimicrón (mm ).

Las longitudes de onda correspondientes al Espectro de la Luz Visible son:

  • Violeta 400 a 425 nm.
  • Azul 425 a 490 nm.
  • Verde 490 a 575 nm.
  • Amarillo 575 a 585 nm.
  • Anaranjado 585 a 650 nm.
  • Rojo 650 a 700 nm.

El espectro de la luz se puede dividir en tres regiones distintas: la región ultravioleta, compuesta por longitudes de onda entre 200 y 399 nm; la región visible, compuesta entre 400 y 700 nm; y la región infrarroja, que va de 700 a 2000 nm. La luz blanca que pasa a través de una abertura para centrar un haz y luego se hace pasar a través de un medio dispersador, se abre en un espectro de colores visibles que van desde el violeta hasta el rojo (observar la siguiente gráfica):

Espectro Electromagnético

ULTRA- ESPECTRO VISIBLE

INFRA-

VIOLETA-

ROJO

nm 350 400 450 500 550 600 650 700

Debido a que cada color tiene la capacidad de absorber cierto color del espectro de determinada longitud de onda, este fenómeno se ha aplicado en Química para determinar a qué longitud de onda se debe leer determinada prueba.

El agua es incolora porque en vez de longitudes de onda específicas de luz permite que todas las longitudes de onda visibles pasen a través de ella.

La propiedad de una substancia de absorber selectivamente ciertas longitudes de onda de la luz, mientras transmite otras, está determinada por la estructura molecular y atómica de la substancia.

El grado al cual una substancia absorbe determinadas longitudes de onda de luz, mientras transmite otras, está determinada por la estructura molecular y atómica de la substancia.

El grado al cual una substancia absorbe determinadas longitudes de onda de luz, depende de la concentración de la substancia en solución; al aumentar la concentración de la substancia aumenta la velocidad de absorción y disminuye la cantidad de luz transmitida; aunque se habla generalmente de la transmisión de la luz de una substancia. Lo que realmente nos interesa es la observación de la luz por substancia, la cual es directamente proporcional a su concentración.

Hematología

La sangre es una suspensión de eritrocitos, leucocitos y plaquetas en el plasma. Fuera del sistema vascular la sangre coagula entre 5 y 8 minutos y si se le agrega algún anticoagulante su estado de suspensión persiste.

Para las pruebas de laboratorio una muestra que puede ser de alguno de los tres tipos siguientes, según la determinación que debamos efectuar:

  • Sangre total con anticoagulante.
  • Suero.
  • Plasma.

Suero y Plasma.

Centrifugando sangre coagulada se separa una masa celular "A" y un fluido sobrenadante "B": el suero.

B

A

Centrifugando una sangre adicionada de un anticoagulante se obtendrán tres capas: una masa celular, que queda en el fondo del tubo y una sobrenadante que es el plasma. Entre ambas capas A y B, habrá una tercera capa C, más pequeña, de color grisáceo – rosado, llamada crema de leucocitos, cuyo principal integrante, como su nombre lo dice, son los leucocitos, pero además contiene plaquetas y eritrocitos nucleados. La zona inmediatamente inferior a la capa C (si los hay) contiene reticulocitos y parásitos del paludismo.

BContiene Fibrinógeno

Reticulocitos C Crema de leucocitos,

Parásito del plaquetas y eritrocitos.

paludismo

A

Nota: La diferencia entre suero y plasma es que el plasma contiene fibrinógeno y el suero carece de él.

Obtención de Muestra de Sangre.

Para efectuar análisis clínicos, las muestras de sangre pueden ser:

  • Sangre capilar o periférica.
  • Sangre venosa.
  • Sangre arterial.

Un caso especial se da en los niños recién nacidos en los que se solicita muestra del cordón umbilical.

Sangre capilar o periférica.

La sangre de flujo es llamada comúnmente capilar o periférica y es la que fluye después de aplicar una punción superficial cutánea. Cuando no es posible obtener una muestra de sangre venosa o no se desea puncionar la vena, algunas pruebas pueden realizarse con sangre capilar o periférica obtenida del lóbulo de la oreja o de la yema del dedo. En los niños recién nacidos por punción del talón.

No es aconsejable utilizar sangre capilar para la cuenta de plaquetas por la rapidez con la que las mismas se adhieren y agregan en el lugar de punción y se obtienen datos falsos de cuentas bajas de plaquetas; en cambio para preparar extendidos en laminillas es mejor hacerlo con sangre capilar, ya que el anticoagulante puede provocar alteraciones en los leucocitos.

Sangre venosa.

La muestra de este tipo se obtiene por punción de una de las tres venas del pliegue del codo: la basílica, la cefálica o la mediana cubital (observar dibujo de la siguiente página) empleando jeringas desechables, con agujas de tipo 21x32, 20x32 o similar, previa limpieza del área elegida con torunda y alcohol; antes de puncionar coloque el torniquete aproximadamente de 8 cm de distancia arriba del pliegue del codo. Soltarlo tan pronto empiece a obtenerse la muestra.

La toma de muestra de niños pequeños es preferible en las venas yugulares externas o de las manos.

Anticoagulantes.

Se consideran como anticoagulantes:

  • Mezcla de oxalatos.
  • Citrato de sodio.
  • Oxalato de sodio.
  • EDTA.
  • Heparina.
  • ACD.
  • CPD.

Mezcla de Oxalatos. También llamada anticoagulante de Wintrobe. Contiene oxalato de amonio, oxalato de potasio, formol y agua.

Para 5ml de sangre se utilizan 0.5ml de la mezcla de anticoagulante (desecado en estufa a 37ºC o a temperatura ambiente antes de utilizarlo); esta solución anticoagulante actúa como tal para fijación de calcio y debe usarse siempre desecado para no diluir la sangre.

Mezcla de oxalatos de sodio y potasio. Es otro anticoagulante conocido como "Mezcla de Paul – Heller".

Citrato de sodio al 3.8% y oxalato de sodio al 1.4%. Se usa en relación de una parte de anticoagulante por cada nueve partes de sangre, habitualmente se usan 0.25ml de la solución para completar a 2.5ml de volumen total con la muestra de sangre.

Actúan en la misma forma que la solución anticoagulante de Wintrobe, es decir, por fijación de calcio.

Son los anticoagulantes de elección para tiempo de protrombina (TP) y tiempo de tromboplastina parcial (TTP).

EDTA (ácido etilen-diamino-tetra-acético). Las sales de sodio y potasio en este ácido se comportan como poderosos anticoagulantes y son anticoagulantes de elección para el trabajo de rutina y Hematología (se utiliza al 10%).

  • No afecta la morfología de las células hemáticas.
  • No modifica la velocidad de sedimentación globular.
  • Sus sinónimos son versenato y secuestreno.

Se le llama secuestreno ya que secuestra al calcio y lo separa de la cascada de la coagulación, impidiendo que la sangre coagule. Se utilizan 0.05ml por cada 3ml de muestra de sangre. Dada la pequeña cantidad de solución, no es necesario desecarla, ya que prácticamente no diluye la sangre a analizar; en exceso afecta adversamente tanto a los eritrocitos como a los leucocitos, causando su encogimiento y provocando cambios en su forma; por ello debe cuidarse de agregar la cantidad correcta de sangre al anticoagulante. Se prefiere la sal tripotásica a la disódica, ya que es más soluble (10 veces más) y ello hace efectiva la mezcla del anticoagulante con la sangre.

Heparina (heparina sódica de 1,000 unidades). La fina capa de solución de heparina de 1,000 unidades:

  • Se utiliza para las gasomerías.
  • La heparina es un excelente anticoagulante.
  • No altera el tamaño de los eritrocitos.
  • Actúa inhibiendo la actividad de la trombina sobre el fibrinógeno y es este mecanismo, el que la hace diferente a los demás anticoagulantes mencionados.

ACD y CPD. Son los principales anticoagulantes utilizados en los bancos de sangre (en las bolsas para la recolección de ésta).

El ACD contiene ácido cítrico, citratos y dextrosa. En este anticoagulante la sangre se mantiene hasta 21 días.

El CPD contiene citratos, fosfatos y dextrosa. El radical es un amortiguados que favorece el pH de la sangre normal (7.4) permanezca así durante más tiempo, por lo que este anticoagulante hace que las bolsas duran 21 días + 7, siempre y cuando el plasma no presente una coloración rojiza (hemólisis) ni tome un color verdusco debido a la panaglutinibilidad o contaminación bacteriana.

Manejo y Conservación de la Muestra.

El tipo de análisis que haya de efectuarse influye sobre las recomendaciones que para cada uso corresponde.

Algunas muestras se deben analizar de inmediato, un ejemplo de esto es la determinación del pH y gases en la sangre; otras pueden ser mantenidas en refrigeración (previa separación del suero o del plasma).

Las determinaciones de:

  • Conteo de plaquetas.
  • Conteo de leucocitos.
  • Determinación de la velocidad de sedimentación.

Deben de hacerse lo más pronto posible después de obtenida la muestra.

Durante este lapso las muestras deben tenerse refrigeradas entre 4 y 8ºC, y antes de ser analizada deben dejarse 15 minutos en rotador (agitador mecánico para asegurar trabajar con una muestra homogénea y que haya adquirido la temperatura ambiente).

Criterios de rechazo de una muestra.

  • Identificación inadecuada.
  • Volumen inadecuado.
  • Uso de tubo inadecuado.
  • Hemólisis.
  • Transporte inadecuado.

Razones para solicitar una prueba de laboratorio.

  • Para descubrir enfermedades subclínicas.
  • Ratificar un diagnóstico sospechado clínicamente.
  • Obtener información pronóstico de una enfermedad.
  • Establecer un diagnóstico en una sospecha no bien definida.
  • Reconocer la respuesta terapéutica.
  • Precisar factores de riesgo.

Alteración de Algunas Pruebas de Laboratorio por Estasis Venosa Prolongada

Prueba o Determinación

Efecto

Mecanismo de Efecto

1) Plaquetas

>

Debe recordarse el papel de las plaquetas en la homeostasis. Estasis venosa; liberación de agentes procoagulantes, agregación, etc.

2) Electrolitos

# <

Se provoca su difusión al espacio intersticial.

3) Glucosa

<

Al estar detenida la circulación disminuye la concentración.

4) Hormonas

< >

Penetración de algunas que se encuentran en el espacio intersticial y consumo de otras.

5) Enzimas

>

Debido a que se encuentran intercelularmente.

6) Hemólisis de elementos

>

Al romperse el eritrocito libera todos los solutos.

7) Caso grave

=

En tiempos prolongados de falsos esquistocitos.

8) Estrés, pH

>

Debido a una disminución parcial en la presión de CO.

9) Estrés, leucocitos, catecolaminas

>

La elevación de catecolaminas provoca un aumento en los ácidos grasos no esterificados.

Nota:

 

 

> - incremento

< - decremento

# - en la mayoría de los casos.

Toma de Muestra de Sangre Arterial.

Técnica Antigua para la Función Arterial

  1. Material:
  • Jeringa de vidrio de 10ml con pivote de metal lubricado con grasa siliconizada estéril, impregnada en su interior con 2.5ml de heparina de 1,000 unidades.
  • Tapón metálico que rosque perfectamente en el pivote de metal.
  • Agujas hipodérmicas estériles de número 21 o de mayor calibre (desechables).
  • Riñón o palangana con hielo y agua.
  • Agujas y jeringas hipodérmicas estériles para infiltración.
  • Xilocaína al 1% sin hepinefrina.
  • Agua y jabón.
  1. Evaluar, seleccionar y localizar el pulso arterial.
  • Radial.
  • Humeral.
  • Femoral.
  • Pedia.
  • Hacer el aseo de la región con agua y jabón.
  • Roscar perfectamente la aguja en el pivote de metal para impedir durante la punción la entrada de aire al interior de la jeringa.
  • Si es necesario infiltrar, con xilocaína al 1% sin hepinefrina, en el sitio seleccionado para la punción cuidando de no picar la arteria.
  • Efectuar punción perpendicular a la arteria y obtener aproximadamente 5ml de sangre.
  • Hacer compresión a la arteria por arriba del sitio de la punción un mínimo de 10 a 15 minutos para evitar la formación de hematoma.
  • Quitar la aguja hipodérmica, sacar las burbujas de aire, si penetraron y cerrar herméticamente el pivote con el tapón de metal.
  • Rotule la jeringa con el nombre del paciente y número de cama.
  • Anotar en la orden la condición en que fue tomada la muestra (respiración de aire ambiental, oxígeno por catéter, con asistencia ventilatoria, etc.).

Se utilizan jeringas preferentemente de vidrio ya que con las de plástico es necesario arrastrar el émbolo, maniobra que puede permitir la entrada de burbujas de aire. Las muestras para determinación de gases arteriales se transportan en hielo y agua, ya que la sangre, como tejido vivo, sigue consumiendo oxígeno y formando anhídrido carbónico aunque ya esté en la jeringa. Al reducir la temperatura se deprime el metabolismo celular y no hay cambios considerables, por lo que puede retardarse el procesamiento de la muestra hasta por una hora.

La cantidad de heparina de 1,000 unidades que queda en el espacio muerto de la jeringa es suficiente para anticoagular de 4 a 5ml de sangre.

El exceso de heparina altera las determinaciones de pH, oxígeno y bióxido de carbono.

Invariablemente se debe utilizar una aguja para picar el tapón de hule del frasco de heparina y otra para puncionar la arteria.

La sangre destinada a este tipo de estudio es sangre total y obtenida en forma anaeróbica.

Glucosa.

Medición de glucosa en sangre.

  1. Por glucosa sanguínea que se entiende como la concentración en la sangre de una substancia química específica: la glucosa.
  2. El azúcar en sangre que incluye además de glucosa, otros azúcares como: lactosa, fructosa y pentosas.
  3. Substancias reductoras en la sangre: es el término que se aplica a todos los componentes de la sangre susceptibles de reducir los iones cúpricos en solución alcalina caliente. Incluye no solamente azúcares, sino también glutatón y ergotionina, glucurónidos, compuestos de ribosa, ácido ascórbico y ácido úrico.

CLASIFICACION

No. De Carbonos Función

Triosas Aldosas

Tetrosas

Pentosas Cetosas

No. DE UNIDADES MOLECULARES

Monosacáridos Disacáridos Oligosacáridos Polisacáridos

Maltosa Estaquiosa (Alto peso

Simples Compuestos Sacarosa Rafinosa molecular y

(solo tiene (diferentes Fructosa complejas)

oxidrilos) radicales)

Azúcares Azúcares Azúcares Azúcares

Aminados Acidos Alcoholes Esteres

(glucosamina) (ác. Glucurónico)(glicerol) (glucosa GP)

Glucosaminoglicanos + Proteínas

Glicoproteínas

(Hormonas, Inmunoglobulinas)

Evolución de los Métodos Químicos para Determinación de Glucosa en Sangre.

Métodos químicos de reducción.

Método de Folin Wu.

Utiliza un filtrado de ácido túngstico de sangre total, que se calienta con una solución de cobre, con reducción de los iones cúpricos a cuprosos.

Los iones cuprosos son entonces medidos fotométricamente (colorimétricamente) por la adición de un exceso de ácido fosfomolíbdico para formar azul de molibdeno.

V.N. = de 80 a 120 mg / 100ml

Objeciones al Método.

  1. La mayor objeción que se hizo a este método fue su inclusión del 15 al 30% de sustancias sacaroideas que no son glucosa.
  2. La cantidad de óxido cuproso formado por cantidades crecientes de azúcar no aumenta con estricta proporcionalidad, además, este óxido cuproso tiende a reoxidarse cuando está expuesto al aire en suspensión caliente, a eso se debe la forma de los tubos de Folin-Wu con una estrechez seguida por ensanchamiento y además la precaución de no agitarlos durante la reacción para evitar la reoxidación.
  3. Una tercera objeción al resultado, reside en la inestabilidad colorimétrica del azul de molibdeno.
  4. Por lo anterior este método dejó de emplearse aproximadamente en los años 60’s.

Método de Nelson – Somogyi.

Utiliza un filtrado de sulfato de zinc en hidróxido de bario que está virtualmente libre de substancias reductoras que no sean glucosa. El ion cuproso formado por el calentamiento de este filtrado con una solución alcalina de cobre se mide fotométricamente por la adición de ácido arsenomolíbdico que forma un complejo coloreado.

V.N. = 60 – 100 mg / 100ml

Folin - Wu

De reducción

Métodos Nelson Somogyi

químicos

Cromogénicos Ortotoluidina

Glucosa-oxidasa

Métodos Glucosa-oxidasa-

enzimáticos peroxidasa

Hexocinasa

Evolución de los Glucosa

métodos para deshidrogenasa

determinar

glucosa en sangre Métodos Método

cromatográficos micromatográfico

(memoria a largo plazo) cuantitativo de la

glicosilada

Métodos

Colorimétricos Frutosamina

Puede considerarse estable y determinante de glucosa verdadera, pero el empleo de demasiados reactivos, y lo complicado de la marcha, resultó no práctico para el análisis de rutina.

Método químico cromogénico: ortotoluidina.

Método de la ortotoluidina.

Al suero o plasma se añade ortotoluidina disuelta en ácido acético glacial y se calienta en baño de agua hirviendo. El color verde estable que forma se mide por medio del espectrofotómetro.

V.N. = 60 – 100 mg / 100ml

Objeciones al Método.

  1. Método que data de 1959.
  2. Se han demostrado sus efectos cancerígenos.
  3. Durante el calentamiento se eliminan vapores tóxicos por lo que es necesario usar campana de extracción.
  4. Los reactivos al contacto con la piel producen quemaduras, ya que contienen ácido acético a concentración elevada, y por lo tanto son corrosivos.
  5. Interfieren la galactosa y manosa y en sus resultados elevados la solución final exhibe turbidez con lo cual pierde linealidad método.
  6. Por todo lo anterior este método también se considera obsoleto.

Métodos enzimáticos.

Estos métodos sufren influencias inhibitorias de:

  1. Acido úrico.
  2. Acido ascórbico.
  3. Bilirrubina.

Son los que en trabajo rutinario dan "el máximo grado de especificidad en la estimación de la glucosa verdadera en la sangre".

Definiciones Importantes.

Gluconeogénesis.

Formación de glucosa o de glucógeno a partir de fuentes que no son carbohidratos.

Glucogenólisis.

Degradación de glucógeno a glucosa.

Glucogénesis.

Síntesis de glucógeno a partir de glucosa.

Tubos para Pruebas de Glucosa.

Tubos SST.

Estos tubos contienen un gel de peso específico mayor que el suero pero menor que el coágulo; durante el proceso de la centrifugación el gel se licúa y se mueve entre los dos; una vez terminada la centrifugación se solidifica formando una barrera para acelerar el proceso de coagulación.

Una vez que se ha llenado el tubo conveniente habrá que invertirlo de 5 a 6 veces para asegurar el efecto óptimo del activado. Esto reduce el tiempo de coagulación a aproximadamente la mitad.

Tubo con tapón gris claro.

Contiene aditivos para conservar la glucosa.

Tubo con fluoruro de sodio.

  • Tapón gris claro.
  • Anticoagulante: oxalato de potasio (o con menos frecuencia EDTA) para preservar muestras del plasma.
  • Conserva la glucosa hasta por cinco días.

Tubos con yodo acetato.

Dado que el yodo acetato no es un anticoagulante, la sangre se coagulará, dando lugar a la presencia de suero.

  • Tapón gris claro.
  • Produce suero.
  • Disponible con heparina (para plasma).
  • Proporciona cifras precisas de glucosa hasta por 24 horas.

Fructosamina.

Valores de referencia.

1.9 – 2.7 mmol / l Intervalo normal

2.7 – 3.2 mmol / l Ajuste satisfactorio

3.2 – 3.7 mmol / l Ajuste regular

Superior a 3.7 mmol / l Mal

Frutosamina y Hemoglobina Glicosilada.

Memoria a Proteínas

corto plazo Plasma + Glucosa Fructosamina

2 a 3 semanas plasmáticas

Memoria a

largo plazo GR Hb + Glucosa Hemoglobina

3 a 4 meses glicosilada

Interpretación Clínica de la Hemoglobina Glicosilada.

Niveles de control % de Hb glicosilada

Pésimo control de la diabetes Superior al 18%

Zona de peligro Entre 14 y 18%

Falla de control de la diabetes Entre 12 y 14%

Buen control de la diabetes Entre 10 y 12%

Excelente control de la diabetes Entre 8 y 10%

Nivel normal Entre 5 y 8%

Nivel de hipoglucemia Menor del 6%

La tolerancia a la glucosa se indica por la naturaleza de la curva de glucosa en sangre después de la administración de una dosis de prueba de este azúcar.

El criterio de normalidad es que la curva regrese a su valor inicial en dos horas.

Examen General de Orina.

Características a Determinar en el E.G.O.

cantidad

Examen Físicocolor y olor

PH

Densidad

albúmina

glucosa

Examen Químicoacetona

hemoglobina

bilirrubina

leucocitos

eritrocitos

granulosos

céreos

cilindro hialinos

de glóbulos blancos

de glóbulos rojos

cilindroides

células escamosas

Examen Microscópico bacterias

tricomonas

espermatozoides

hongos

parásitos

oxalato de calcio

fosfato

cristales de fosfatos triples amonio

Magnesio

fosfatos y uratos amorfos

Volumen.

La mayoría de los adultos eliminan entre 1,000 y 1,500ml de orina en 24 horas en climas templados, cantidad que disminuye en verano y aumenta en invierno; salvo los ancianos que pueden orinar una vez durante la noche, los adultos sanos no tienen nicturia, a menos que hayan ingerido líquidos inmediatamente antes de acostarse.

Durante el día los adultos generalmente orinan entre 5 y 9 veces y el volumen por cada micción es de 100 a 300ml.

Para el examen rutinario el volumen solo se mide si la orina es de 24 horas, ya que esta variará entre el volumen de líquido ingerido y con la cantidad de agua eliminada a través de la piel, los pulmones e intestino.

Densidad.

La manera más conveniente de medir la función de concentración y dilución del riñón es medir la densidad de la orina.

La densidad la da la concentración de substancias disueltas en la orina; normalmente varía de 1,015 a 1,025gr / ml. El grado de densidad de la orina en pacientes con riñones sanos proporciona información acerca del estado de hidratación del paciente, por ejemplo, en el postoperatorio o durante una enfermedad febril, una orina muy concentrada indica deshidratación.

La densidad está disminuida en:

  • Nefrosis crónica.
  • Diabetes insípida.

La densidad está elevada en:

  • Nefritis degenerativa.
  • Fiebre.

Técnica.

En una probeta de 25ml poner 20ml de orina e introducir el densímetro imprimiendo un movimiento rápido de rotación sin que toque las paredes del recipiente. Se lee la densidad en el menisco inferior.

pH.

Los riñones normales pueden producir orinas con una gran variedad de pH (de 4.6 a 8). Ingestión de diferentes alimentos, varias dietas y substancias químicas (como bicarbonato de sodio) también afecta el pH urinario. Para que el pH urinario tenga un significado clínico debe hacerse la medición en orinas recién emitidas.

Las orinas altamente concentradas como las que se forman en ambientes cálidos y secos son generalmente fuertemente ácidas y pueden ser irritantes.

En el tratamiento de ciertos cálculos renales que se desarrolla en orinas ácidas, debe mantenerse la orina alcalina.

Una orina persistentemente alcalina o ácida sugiere la presencia de una enfermedad orgánica o del aparato urinario, o puede presentarse después de la ingestión de ciertas drogas.

Orinas persistentemente ácidas se encuentran en:

  • Acidosis metabólica (debida a cetosis diabética, inanición y diarrea severa)
  • Acidosis respiratoria.
  • Fiebre.
  • Intoxicación por alcohol metílico.
  • Tuberculosis renal.
  • Insuficiencia renal aguda.
  • Pielonefritis.

Orinas persistentemente alcalinas encontramos en:

  • Infecciones genitourinarias por Proteus.
  • En estados de alcalosis (respiratoria o metabólica).
  • Al ingerir diuréticos.
  • Síndrome de Cushing.
  • Carcinoma bronquial.

Técnica.

Empapar un pedazo de papel pH en la orina y compara con la escala de valores según el color del pH.

Albúmina.

La orina normal generalmente contiene trazas de albúmina que son tan pequeñas que no pueden ser detectadas con las pruebas de rutina.

Proteinuria o albuminuria.

Se le llama al aumento de las proteínas urinarias. Normalmente puede aparecer la llamada albuminuria transitoria de causa extra renal, como por ejemplo exceso de ingestión proteica, exposición prolongada al frío, estados emocionales intensos y después de actividades físicas excesivas.

Las tiras reactivas son más sensibles a la albúmina que a otras proteínas, mientras que las pruebas con calor y con ácidos son sensibles a todas las proteínas.

Falsos positivos de albúmina pueden deberse a la contaminación con secreción vaginal, semen, moco, pus o sangre.

Proteínas de Bence Jones.

Es la única proteína que presenta coagulación reversible, precipita al calentarse la orina a 50ºC y al continuar aumentando la temperatura, se disuelve aproximadamente a los 80ºC. Su peso molecular es muy bajo (35,000 u.m.a.). Está presente principalmente en mieloma múltiple.

Patología de la albúmina.

La proteinuria se presenta generalmente en la patología renal que cursa con un aumento de permeabilidad del glomérulo, como por ejemplo, gomerulonefritis, síndrome nefrótico, pielonefritis, hipertensión arterial, carcinomas, proteinuria ortostática, tuberculosis renal, toxemia del embarazo, diabetes mellitus, gota, estados febriles agudos, quemaduras por corrientes eléctricas, etc.

Técnica.

En tubos de 13x100, centrifugar la orina durante 10 minutos a 5,000 r.p.m. Colocar en un tubo de 15x150, 2ml de orina centrifugada y estratificar 1ml de HNO3 concentrado o reactivo de Robert. La aparición de un anillo blanco (anillo de Heller) indica la presencia de albúmina.

Fundamento.

Todos los procedimientos se basan en precipitar irreversiblemente las proteínas con reactivos químicos como el ácido sulfosalicílico, ácido nítrico concentrado, el reactivo de Robert y el tricloroacético o coagularlas por medio de calor.

Determinación de Glucosa.

La orina normal contiene cantidades pequeñas de azúcares dentro de las cuales encontramos fructosa, levulosa, pentosa, galactosa, glucosa, maltosa, etc., que no son detectados por esas pruebas rutinarias del laboratorio. En el riñón sano, después de que la glucosa ha sido filtrada a través del glomérulo, la mayor parte es absorbida por el túbulo proximal.

La glucosuria se presenta cuando es sobrepasado el umbral renal, el cual es variable de persona a persona, sin embargo, está situado generalmente al nivel de glucosa en sangre de 150 a 180mg / 100ml.

La causa más importante de una glucosuria es la diabetes mellitus; existen otros padecimientos en los cuales también se presenta glucosuria, por ejemplo, pancreatitis, trombosis coronaria, glucosuria alimenticia, cáncer pancreático, embarazo, dolor, excitación, hipertiroidismo, traumatismo cráneo – encefálico.

Método de Benedict.

Técnica.

Colocar un tubo de 13x100mm, 1ml de reactivo de Benedict, añadir 5 gotas de orina y mezclar; posteriormente, colocar el tubo a baño de agua hirviendo durante 5 minutos, dejar enfriar y observar. La aparición de precipitado de color que va del amarillo – café – rojo ladrillo, indica la presencia de glucosa.

Fundamento.

Estos procedimientos se basan en la propiedad de los azúcares de reducir con rapidez el cobre de la solución alcalina del reactivo de Benedict, haciéndolo pasar de ion cúprico a oxido cuproso con formación del precipitado del color antes indicado.

Otros métodos para la determinación de glucosa en orina.

  • Fehling.
  • Nylander.
  • Tiras reactivas.

Determinación de acetonas.

La presencia de cuerpos cetónicos en la orina es conocida como cetonuria. Los llamados cuerpos cetónicos de la orina son el ácido acetoacético, la acetona, el ácido betahidroxibutírico. Este último constituye del 40 al 70% del total de los cuerpos cetónicos.

Puede haber cetonuria en personas normales que consumen dietas deficientes en carbohidratos, durante la exposición al frío y después de ejercicios intensos y prolongados.

Patología.

La cetonuria puede observarse en diabetes mellitus descompensada; la detección de cuerpos cetónicos en el diabético proporciona la clave para el diagnóstico temprano de la cetoacidosis y como diabético. En la diabética embarazada es importante la investigación de cetonas, por que la cetoacidosis es un factor importante que contribuye a la muerte fetal.

También se encuentra cetonuria en vómitos, deshidratación, diarreas, fiebres, desnutrición, eclampsia, anestesia con cloroformo o éter, dietas bajas en carbohidratos, hipertiroidismo, etc.

Técnica.

Poner en una placa con excavaciones de 0.2g de reactivo de Rothera y añadir 5 gotas de orina problema. Una coloración violeta indica la presencia de acetona.

Los cuerpos cetónicos se forman durante el catabolismo de los ácidos grasos. El olor a acetona (manzana), puede detectarse en el aliento de pacientes con altos niveles de cetonas en la sangre.

Fundamento.

Este procedimiento se basa en que el ácido acetoacético y la acetona reaccionan en medio alcalino con nitroprusiato de sodio (principal componente del reactivo de Rothera) formando un complejo de color violeta.

Determinación de hemoglobina.

En términos generales la sangre se manifiesta en la orina bajo tres formas:

  • Hematuria. Presencia de glóbulos rojos intactos en la orina y puede ser microhematuria o macrohematuria (visible o no visible).
  • Hemoglobinuria. Presencia de hemoglobina libre en la orina.
  • Mioglobinuria. Presencia de mioglobina en la orina.

Existe la llamada hematuria falsa que es una contaminación de la orina por la sangre del tubo digestivo bajo o sangre genital.

Patología.

Puede observarse hematuria en los siguientes padecimiento:

  • Cálculos renales.
  • Carcinoma renal.
  • Síndrome nefrótico.
  • Riñón poliquístico.
  • Nefritis aguda.
  • Cirrosis.

Puede observarse hemoglobinuria en:

  • Quemaduras graves.
  • Anemias hemolíticas.
  • Enfriamientos repentinos.
  • Reacciones alérgicas.
  • Mieloma múltiple.
  • Reacciones postransfuncionales.

Técnica.

Al sedimento de la orina problema, agregar unas 3 gotas de ácido acético al 5%, 3 gotas de solución alcohólica de piramidón, y 3 gotas de peróxido de hidrógeno al 3%. Agitar. Una coloración azul indica la presencia de hemoglobima.

Fundamento.

Todos los procedimientos se basan en la propiedad química de la Hb. De catalizar la rápida oxidación de ciertas diaminas cromáticas por peróxido de hidrógeno.

Determinación de bilirrubina.

Es el resultado de la degradación de Hb en el sistema reticuloendotelial. Normalmente en un individuo sano, no debe aparecer bilirrubina en la orina, ya que la presencia de esta sugiere destrucción parcial o total del sistema biliar intra o extrahepático y daño hepatocelular.

En los microsomas de hepatocitos se conjuga la bilirrubina de la orina con el ácido glucurónico, formando el glucoronato de bilirrubina (bilirrubina directa, el cual se excreta junto con la bilis del intestino en donde se transforma en estercobilinógeno).

La bilirrubina conjugada o directa es susceptible de eliminarse por la orina, en tanto que la bilirrubina directa no lo es.

A partir de 2 a 4 miligramos de bilirrubina en suero se origina la ictericia.

Patología.

La eliminación de bilirrubina puede apreciarse en las diversas formas de ictericia obstructiva intra y extrahepática, así como en la parenquimatosa.

Hepatitis infecciosa.

Es un hallazgo temprano y puede aparecer antes que un aumento demostrativo de la bilirrubina sérica. En casos muy leves durante una epidemia. El único hallazgo positivo puede ser una reacción positiva de la bilirrubina en la orina. También se encuentra bilirrubina en la orina en hepatitis aguda o crónica, hepatitis viral, cirrosis, carcinoma de la cabeza o páncreas y en algunas intoxicaciones.

Técnica.

A 20ml de orina, agregar 10ml de cloruro de bario, filtrado y sobre el precipitado agregar unas gotas de reactivo de Fouchet. Una coloración verde azulada indicará la presencia de bilirrubina.

Fundamento.

Casi todas las pruebas habituales para la determinación de bilirrubinas se basan en su oxidación a biliverdina al contacto con el reactivo de Fouchet.

Valores normales del examen general de orina.

Volumen800 – 1,500 en 24 horas

Densidad1015 – 1020 g/l

pH 6 – 7

Albúmina No hay

Glucosa No hay

Acetona No hay

Hemoglobina No hay

Bilirrubina No hay

Sedimento Observación microscópica en seco fuerte

Leucocitos: menos de 10 por campo

Eritrocitos: de 0 a 1 por campo

Cilindros: no hay

Información Vía Proyección (Diapositivas)

Tema: Carbohidratos

  1. Factores que desencadenan una diabetes.
  • Emociones.
  • Infecciones severas.
  • Intervenciones quirúrgicas.
  • Embarazo.
  1. Síntomas de la diabetes.
  • Poliuria.
  • Polidipsia.
  • Polifagia.
  • Pérdida de peso.
  1. La diabetes puede ocasionar.
  • Infarto al miocardio.
  • Retinopatía diabética.
  • Insuficiencia renal.
  • Gangrena.
  1. Síntomas del coma hipoglicémico.
  • Hambre.
  • Debilidad.
  • Mareos.
  • Palpitaciones.
  • Cefalea.
  • Palidez.
  • Sudoración.
  • Sueño.
  • Pérdida de la conciencia.

Trabajo realizado por:

Moisés Iván Cuevas Palacios

Estudiante de Ing. Industrial, 19 años

Xalapa, Veracruz, México


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