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Cysticercus bovis




Enviado por chrisvinu



     

    Cysticercus bovis

    Indice
    1.
    Introducción

    2. Morfología y anatomía
    del parásito.

    3. Ciclo
    biológico.

    4.
    Epidemiología.

    5. Control de la teniasis por taenia
    saginata y cisticercosis por Cysticercus
    bovis.

    6. Bibliografía

    1.
    Introducción

    El complejo Taenia saginata – Cysticercus bovis
    es un problema de salud
    pública a escala mundial;
    más conocido en los países industrializados, en
    donde su epidemiología está ligada, principalmente,
    a los hábitos de consumo de
    carne de res. En Latinoamérica, el problema ha sido
    subestimado por la falta de implementación de métodos de
    diagnóstico avanzados,
    descuidándose, incluso, el diagnóstico diferencial entre Taenia
    saginata y Taenia solium.
    Entre los factores que predisponen la existencia de esta
    parasitosis podemos mencionar: el sistema de
    explotación animal, falta de medidas higiénico
    sanitarias y el desconocimiento de la presencia y la
    epidemiología de esta enfermedad.
    La ayuda que nos brinda un método de
    alta sensibilidad y especificidad, como el
    Inmunodiagnóstico de Cisticercosis por ELISA-Ag , y la
    posibilidad de realizar la inspección veterinaria post
    mortem en el Camal Municipal de Riobamba (CMR), ha permitido
    realizar un estudio epidemiológico, con el fin de conocer
    la presencia de C. bovis, en el área de influencia de
    dicho centro de faenamiento, y de comparar la sensibilidad entre
    estos dos métodos de
    diagnóstico.

    Clasificación taxonómica (ncbi,
    2001).
    Supereino: eukariota.
    Reino: metazoa.
    Phylum: platyhelminthes .
    Subphylum: neodermata.
    Clase: cestoda.
    Subclase: eucestoda.
    Orden: ciclophyllidea.
    Familia:
    taeniidae.
    Genero:
    taenia.
    Especie: saginata.

    2. Morfología
    y anatomía
    del parásito.

    Morfología.
    El complejo teniasis / cistercosis por Taenia saginata,
    está compuesto por su fase adulta (T. saginata)
    presente en el intestino del hombre, y su
    metacéstodo (Cysticercus bovis) que se encuentra en los
    músculos de los bovinos.
    Según SOULSBY,E.,J.,L, 1987, la T. saginata es un
    céstodo con cuerpo acintado que mide entre 4, 8 y hasta 25
    m, consta de una cabeza o escólex seguida de una
    porción corta sin segmentar, llamada cuello o zona
    germinativa, y el resto del cuerpo o estróbilo formado por
    proglótidos.
    Al decir de GOEZE, 1782, citado por BORCHERT, A, 1975, el
    escólex es piriforme, mide de 1 a 2 mm, tiene cuatro
    ventosas con un diámetro de 0.5 a 0.8 mm y es inerme (no
    posee rostelo ni ganchos). También señala que el
    cuello es más largo que el de T. solium y aproximadamente
    de la mitad del grosor del escólex. A partir de
    éste, (cuello o zona germinativa) se desarrollan los
    proglótidos que maduran según se van alejando del
    escólex.
    SOULSBY,E.,J.,L, 1987, indica que el estróbilo está
    formado por proglótidos separados por constricciones
    transversales. El número de proglotis puede ser de 1000 a
    2000, como lo señala BORCHERT, A, 1975. Los
    proglótidos son de tres tipos, inmaduros, y maduros y
    grávidos.

    Sistema Reproductivo.
    Como lo señala SOULSBY,E.,J.,L, 1987, la T. saginata es un
    parásito hermafrodita, los órganos reproductores
    maduran desde los proglótidos anteriores a los
    posteriores, siendo en éstos, donde se realiza la fecundación.

    Órganos genitales masculinos.
    Como lo manifiesta LAPAGE, G, 1968, cada proglótido puede
    tener de 300 a 400 testículos, éstos descargan sus
    productos en
    los conductos eferentes que se unen y forman el conducto
    deferente, el cual termina en el cirro cubierto por el saco del
    cirro en el seno genital junto al poro genital femenino. El saco
    del cirro de T. saginata no se extiende a los canales
    excretores.

    Órganos genitales femeninos.
    El poro genital femenino da paso a una vagina tubular que tiene
    un esfínter muscular vaginal. La vagina termina en el
    lugar de conexión del oviducto y el conducto vitelino,
    esto es, en el ootipo, que está rodeado de
    glándulas de Mehlis. El ovario es bilobulado y las
    células
    vitelinas son compactas. El útero parte del ootipo, es
    ramificado y ciego, según SOULSBY,E.,J.,L, 1987.
    Los huevos de T. saginata son ovales, miden de 46 a 50 por 39 a
    41 μm, tienen una membrana llamada embriσforo la cual es gruesa y estriada
    radialmente, secreta queratina y rodea a la
    oncσsfera o embrión hexacanto,
    denominado así por presentar 3 pares de ganchos.
    Los proglótidos grávidos abandonan el hospedador
    espontáneamente o con las heces como lo indica BORCHERT,
    A, 1975, estos contienen alrededor de 80.000 a 100.000 huevos y
    el útero tiene de 14 a 32 ramas laterales.

    Aparato Digestivo.
    No tiene aparato digestivo
    ni cavidad celómica (corporal). El cuerpo está
    cubierto por una capa externa sincitial de células
    tegumentarias, en la que se distinguen pequeñas
    microvellosidades llamadas microtricos o microvilli, cubiertos
    por una membrana plasmática microtubular que permite la
    absorción; debajo de esta, está la muscular que
    penetra el parénquima, SOULSBY,E.,J.,L, 1987.

    3. Ciclo
    biológico.

    Según lo manifiesta LAPAGE, G, 1968, los
    proglótidos grávidos se eliminan con las heces del
    hospedador definitivo, o bien salen espontáneamente por el
    ano, y los huevos se liberan por expulsión o por
    desintegración de los proglótidos. Los
    proglótidos son móviles y migran unos pocos
    centímetros por el cuerpo, ropa, cama o suelo, eliminando
    huevos en el proceso.
    Los huevos pueden permanecer viables durante algunas semanas en
    aguas residuales, ríos o en el pasto, según
    PAWLOWSKY y SCHULTZ, 1972. Según lo manifestado por JEPSEN
    y ROTH, 1949, el hombre
    disemina los huevos contaminando las plantas y
    el agua,
    pudiéndose mantener viables por 71 días en el
    estiércol líquido, 16 días en aguas
    residuales urbanas, 33 días en el agua de los
    ríos y 156 días en el pasto.
    Según BROCHERT, A, 1975, cuando los bovinos ingieren los
    huevos se disuelve la cáscara, con lo que la
    oncósfera queda libre y se activa por la influencia de los
    jugos gástricos e intestinal, ésta penetra a
    través de la mucosa intestinal hasta llegar a la
    circulación general. Los embriones se diseminan por todo
    el cuerpo siendo a las 18 semanas infestantes.
    Como lo manifiesta MEHLHORN, H., et al, 1993, en estas
    ubicaciones se desarrolla el cisticerco (C. bovis) que puede
    llegar a medir hasta 10 por 4.5 mm de diámetro y
    permanecer viable durante 9 meses o más.

    4.
    Epidemiología.

    DORNY., et al, 2000, realizaron un estudio en
    Bélgica encontrando una prevalencia de 3.09% a
    través de la técnica ELISA – Ag, y de 0.26% a
    la inspección veterinaria post mortem en 1164 bovinos.
    La FAO / WHO / OIE, 1995, reportaron la presencia de C. bovis en
    Argentina,
    Bolivia,
    Chile,
    Paraguay,
    Uruguay y
    Venezuela. En
    Brasil, de
    1986 a 1993, la prevalencia de C. bovis por inspección
    veterinaria fue de 1.04% (CAMARO., et al, 1997).
    La OPS / OMS, 1993, señalan que la prevalencia de Taenia
    saginata en Chile entre
    1985 – 1994 fue 0.08 %, en Guatemala
    1964, 1.7 %, y en Panamá
    1960, 0.2 %.
    Se ha estimado que las pérdidas por cisticercosis de T.
    saginata en los países en desarrollo son
    de USD 25 por animal infectado; y de USD 75 por animal infectado
    en países industrializados según, PAWLOWSKI y
    SCHULTZ citados por ACHA, P., PZIFRES, B, 1986.

    Epidemiología de la teniasis por T. saginata y
    cisticercosis por C. bovis en el Ecuador.
    En el Ecuador, C.
    bovis, ha sido de ocurrencia excepcional, y es una enfermedad
    notificable (FAO-OIE-WHO; Animal Health Year Book, 1982);
    así mismo según su última publicación
    señalan que a partir de 1985 – 1995, no existe
    reporte alguno (FAO, WHO, OIE; Animal Health Year Book desde 1985
    hasta1995).
    Según el Ministerio de Salud Pública del
    Ecuador la tasa de incidencia de Taenia spp. entre 1990 a 1999
    fue 1.7%, siendo de 2.6% para la provincia de Chimborazo en
    1999.
    BRIONES, G, 1969, realizó un estudio en el cantón
    Portoviejo, en la provincia de Manabí, encontrando una
    incidencia para C. bovis de 1.89 %. ERAZO., et al, 1998, cita,
    que la prevalencia en la provincia de Guayas fue 0.11%.
    RODRÍGUEZ, R, 2001, evidenció la existencia de la
    fase adulta de éste parásito, analizando
    veinticinco muestras de proglótidos de Taenia spp. en el
    Instituto de Medicina Tropical
    Amberes Bélgica por Reacción de la Cadena
    Polimerasa (PCR); de éstas, dieciocho resultaron positivas
    a T. saginata.
    RODRÍGUEZ, R, 2001 indica que con el análisis serológico por ELISA
    sándwich (ICCE), de 397 muestras tomadas en el
    cantón de Ibarra (Imbabura) 23 fueron positivas (15.7%) y
    en el cantón Quito (Pichincha) de 472 muestras 12 (2.54%)
    fueron positivas.

    Diagnóstico de la teniasis por Taenia saginata
    y cisticercosis por Cysticercus bovis.
    Diagnóstico de T. saginata.
    Diagnóstico Clínico.
    Según SÁNCHEZ, C, citado por CORDERO DEL CAMPILLO,
    M, 1999, la parasitosis puede ser asintomática, y los
    síntomas, en el caso de presentarse, pueden dividirse en
    cuatro grupos: uno
    caracterizado por eliminación de proglótidos
    espontáneamente o con la defecación, en los cuales
    hay prurito perianal y urticaria, otro con trastornos nerviosos
    (psicogénicos), un tercer grupo con
    disminución de apetito, y decaimiento, y un cuarto en el
    que se incluyen trastornos gastrointestinales. Si los
    proglótidos migran a otros órganos pueden causar
    apendicitis, colecistitis y trastornos
    respiratorios.

    Diagnóstico de laboratorio.
    La OMS / OPS, 1993, menciona los siguientes métodos
    coproparasitarios para la detección de huevos de Taenia
    spp.
    a) Frotis fecal directo.
    Es la preparación en fresco de la muestra con suero
    salino y solución yodada. Es sencillo y de bajo costo, por lo que
    es muy empleado, pero su sensibilidad es muy baja.
    b) Frotis fecal grueso en celofán de calibre estandarizado
    (técnica de Kato- Katz).
    Este método ha
    sido utilizado en programas de
    control de
    esquistosomiasis, y algunos investigadores, como CRUZ, M., et al,
    1993, han obtenido mejores resultados en el diagnóstico de
    teniasis que con el examen directo.
    c) Métodos coproparasitarios de
    concentración.

    • Flotación, es de poca sensibilidad en la
      detección de cestodos.
    • Centrifugación y flotación, cuando
      se utiliza en forma seriada puede ofrecer buenos
      resultados.
    • Sedimentación, es útil en la
      detección de huevos densos, su sensibilidad no es mayor
      al 60%.

    d) Técnica de frotis perianal.
    Se hace un frote en la región anal y perianal con la parte
    adhesiva de papel adhesivo
    transparente, lo que permite recolectar los huevos o
    proglótidos de Taenia spp. adheridos a dicha zona.
    e) Técnica de Ritchie o técnica de
    concentración formol – éter (Ritchie, 1948).
    Es utilizada para concentrar huevos y larvas de helmintos,
    así como quistes de protozoarios presentes en las heces,
    especialmente cuando no se han obtenido buenos resultados debido
    al exceso en el contenido de grasas y ácidos
    grasos.
    f) Coproantígenos.
    Como lo señala ALLAN, J. C., et al, 1992, se basa en la
    detección de antígenos específicos de Taenia
    spp. en heces, utilizando un ELISA, aún si la
    infestación se encuentra en fase prepatente. Esta prueba
    tiene una sensibilidad del 100% y una especificidad del
    94%.

    Diagnóstico de C. bovis.
    Diagnóstico Clínico.
    Por lo general la infección en rumiantes es
    asintomática, y a pesar de que la curva de peso no se ve
    afectada, puede haber cierto grado de anemia. En infestaciones
    masivas puede presentarse salivación, anorexia,
    fiebre, cardiopatía grave por degeneración del
    miocardio y muerte
    súbita por colapso cardiaco, como lo menciona
    SÁNCHEZ, C, citado por CORDERO DEL CAMPILLO, M,
    1999.

    Diagnóstico post – mortem.
    El diagnóstico post-mortem se realiza en el camal haciendo
    cortes en los músculos en donde se sitúa con
    predilección el C. bovis, éstos, al decir de SANZ
    EGAÑA, 1967, son en orden de preferencia los
    músculos maseteros internos y externos, pterigoideos,
    corazón, lengua,
    músculos del cuello, diafragma, intercostales y en fuertes
    infestaciones en los ganglios linfáticos, cerebro,
    esófago y pulmones, así mismo SAINI, P., et al
    1996, menciona que los lugares en donde se encuentra con
    más alta concentración larvaria son: el corazón,
    lengua,
    maseteros, diafragma y músculos de los miembros
    posteriores y anteriores. Sin embargo, SOULSBY,E.,J.,L, 1987,
    señala que los cisticercos se pueden distribuir en todo el
    cuerpo.
    Como lo señalan BLAZEK., et al, 1981, las infestaciones
    con C. bovis suelen ser débiles, por lo que escapan
    fácilmente a la inspección veterinaria, llegando a
    ser una causa importante de la parasitosis en el
    hombre.

    Diagnóstico Inmunológico.
    ELISA sándwich.
    En 1992, BRANDT, J., et al, desarrollaron anticuerpos
    monoclonales de tipo IgGM, para la detección de
    antígenos de C bovis determinando una baja sensibilidad.
    Posteriormente VAN KERCKHOVEN, I., et al, 1998, modifica la
    prueba, mediante la adición del TCA en la
    disociación de los complejos antígeno anticuerpo
    elevando, de esta manera, la sensibilidad de la prueba a un 92%
    con una especificidad de un 98.7%.
    Este método se basa en la captura de un antígeno
    (Ag) por medio de un Anticuerpo (Ac) fijado a una base
    sólida. La presencia del Ag se pone en evidencia, cuando
    al incubar el complejo Ag-Ac, con una Inmunoglobulina (Ig) fijada
    a una enzima, y agregando un sustrato, se produce una
    reacción de color.

    Diagnóstico diferencial entre T. solium y T.
    saginata.
    Diagnóstico Morfológico.
    El diagnóstico diferencial entre T. solium y T. saginata,
    se hace comparando las estructuras
    anatómicas de estos dos parásitos.
    En el siguiente cuadro se ha tomado el criterio de LAPAGE, G,
    1968; ACHA, P., PZIFRES, B, 1986; BORCHERT, 1975; CORDERO DEL
    CAMPILLO, M, 1999 y SOULSBY,E.,J.,L, 1987.
    CUADRO 1.
    Diagnóstico diferencial entre T. solium y T.
    saginata.

    Característica.

    Taenia solium.

    Taenia saginata.

    ESTRÓBILO.

     

    2 – 5 (8)

     

    4 – 8 (25)

    Longitud (m).

    Ancho (mm).

    10 – 12

    12 – 14

    Proglótidos (número).

    800 – 1 000

    1 000 – 2 000

    ESCOLEX.

    Diámetro (mm).

    0.6 – 1

    1 – 2

    Ventosas.

    4

    4

    Rostelo.

    Presente

    Ausente

    Ganchos (número).

    22 – 32

    Ausente

    PROGLÓTIDOS.

    Manera de salir del hospedador.

    En grupo,
    con las heces

    (pasivamente)

    Aislados, eliminados con las heces o
    espontáneamente

    Número de proglótidos expulsados
    por día.

    3-5

    10

    Testículos (número).

    150 – 200

    500 – 600

    Ovario (número de
    lóbulos).

    3

    2

    Saco del cirro.

    Llega a canales excretores

    No llega a canales excretores

    Esfínter vaginal.

    Ausente

    Presente

    Ramas uterinas.

    7 – 20

    14 – 35

    HUEVOS.

    Forma.

    Esféricos

    Ovales

    Tamaño de los huevos (μ).

    26 – 34

    46 – 50 x 39 – 41

    Número de huevos por
    proglotis.

    40 000

    80 000 – 100 000

    TENIA.

    Hombre

    Hombre

    Hospedador definitivo.

    Hospedador intermediario.

    cerdo, jabalí y hombre

    Bóvidos

    Ubicación de la Taenia.

    Duodeno

    Duodeno – yeyuno

    Tamaño del metacéstodo
    (mm).

    20 x 10

    10 x 6

    Ubicación del metacestodo de
    Taenia.

    Músculos esquelético y
    cardíaco, cerebro, ojo, tejido
    subcutáneo

    Músculos esquelético y
    cardíaco

    Fuente: LAPAGE, G, 1968., ACHA, P.,
    PZIFRES, B, 1986., BORCHERT, A, 1975., CORDERO DEL CAMPILLO, M,
    1999., SOULSBY,E.,J.,L, 1987.

    Elaboración: Los Autores.
    Se ha utilizado el número de ramas laterales del
    útero como criterio de diagnóstico para diferenciar
    los proglótidos de T. saginata de los de T. solium. Sin
    embargo VERSTER, 1969, citado por SOULSBY,E.,J.,L, 1987, menciona
    que este parámetro es poco confiable, y la presencia o
    ausencia de un esfínter vaginal es un criterio más
    adecuado.
    Al decir de la OMS, 1983, los huevos de T. saginata y T. solium
    no pueden ser diferenciados morfológicamente entre
    sí.

     

    T. solium  

    T. solium T.
    saginata

    T. solium T.
    saginata

    Reacción en cadena de la polimerasa
    (PCR).
    Como lo mencionan STIDES D. P. Y ETR A. J., 1991, la PCR es una
    técnica de ampliación de una secuencia conocida de
    DNA que contiene un gen específico. Para secuenciar el
    segmento de DNA que contiene el gen específico se siguen
    tres pasos principales:

    • Desnaturalización del DNA en bandas
      sencillas.
    • Fijación de dos "primers"
      oligonucléicos a los bordes del
      segmento.
    • Extensión de los primers mediante
      polimerización de DNA, para formar un nuevo DNA de doble
      cadena.

    Las nuevas copias de DNA sirven como plantillas
    para nuevos ciclos que inician una reacción en cadena, lo
    que en unas pocas horas, cerca de 25 a 30 ciclos, reproducen
    más de 105 a 106 de copias de la
    secuencia escogida, lo que ofrece suficiente material
    genético para realizar pruebas
    moleculares, según SMITH y WOOD, 1998.
    MAYTA et al., 2.000 mencionan que se pueden hacer estudios
    comparativos entre T. solium y T. saginata utilizando un segmento
    conocido, el 5.8S ribosomal y son GONZÁLEZ et al., 2000
    quienes describen una técnica para diferenciación
    entre T. solium y T. saginata utilizando marcadores
    oligonucleótidos específicos de cada especie.
    Ç
    RODRÍGUEZ, R, 2001, utilizó la técnica de
    PCR, en el segmento 12srDNA mitocondrial, con el objetivo de
    diferenciar T. saginata de T. solium, encontrando, en una
    muestra de 25
    taenias procedentes del Ecuador, 18 casos de Taenia
    saginata.

    Técnica de coloración
    Semichon’s carmine.
    Esta técnica permite colorear las ramas uterinas en los
    proglótidos de una Taenia spp. para hacer el
    diagnóstico diferencial.
    El esquema de su procedimiento
    es:

    1. Fijación AFA (Alcohol,
      Formol, Ácido acético).
    2. Coloración (Semichon’s
      carmine).
    3. Decoloración (HCl).
    4. Deshidratación.
    5. Aclaración de tejidos
      (Xilol).
    6. Montaje (Permount).

    Isoenzímas.
    En la actualidad esta es una valiosa herramienta para el
    diagnóstico diferencial entre T. solium y T. saginata
    basada en la diferenciación de enzimas presentes
    en estos organismos. Según LE RICHE y SEWELL, 1978, y
    RODRÍGUEZ, R, 2001, el uso GPI (glucosa fosfato
    isomerasa), permite diferenciar enzimaticamente a las dos
    tenias.

    5. Control de la
    teniasis por taenia saginata y cisticercosis por Cysticercus
    bovis.

    Según CORDERO DEL CAMPILLO, M, 1999, la OMS
    indica que la prevención de esta parasitosis debe basarse
    en tres puntos:
    a) Control veterinario de las carcasas y vísceras.- Es una
    importante medida preventiva que debe ser tomada en los centros
    de abasto.
    b) Educación
    higiénico sanitaria de la población.- Es indispensable para evitar la
    infección a los bovinos, está orientada a que las
    personas no tengan el hábito de dispersar sus heces y a
    mejorar las costumbres alimenticias e higiénicas de la
    población.
    c) Control y mejora de las redes de saneamiento.-
    Mejorando las infraestructura sanitaria como alcantarillado,
    tratamiento de aguas residuales, protección del agua potable y
    zonas de pastoreo, así como el tratamiento a las personas
    que han contraído la parasitosis.
    Al decir de PAWLOWSKY y SCHULTZ, 1972, citados por
    SOULSBY,E.,J.,L, 1987, los huevos pueden permanecer viables por
    semanas en aguas residuales, ríos y en el pasto.
    A pesar de que no existen referencias con respecto a C. bovis,
    SOTELO, J., et. al, 1986, menciona que se puede impedir la
    supervivencia de C. cellulosae sometiendo las carcasas afectadas
    a una temperaturas de: -5°C por 4 días, -15°C por
    3 días, o –24°C por 24 horas.
    TRABAJO PRESENTADO EN EL "INTERNATIOAL WORKSHOP ON TENIASIS AND
    CISTICERCOSIS" 19 AL 21 DE SEPTIEMBRE, 2001
    Quito – Ecuador
    Inmunodiagnostico de cysticercus bovis en el camal
    frigorífico municipal de riobamba (cfmr) por medio de la
    técnica elisa-ag.
    Vinueza,c1., Gallegos, c1., Barrionuevo,
    m2., Celi, m2., Benitez,
    w2.

    Resumen.
    La presente investigación tuvo como objetivo
    determinar la presencia y las zonas de mayor influencia de
    Cysticercus bovis, en los boviŠos faenados en el Camal
    Frigorífico Municipal de Riobamba (C¢MR), Provincia
    de Chjmborazo – Ecuador, comparando dos métodos de
    diagnó6tico, la técnica ELISA-Ag y el método
    de inspección veterinaria, realizando cortes en el
    corazón, diafragma, esófago y músculos
    maceteros. Durante la intervención en el CFMR, 1200
    bovinos fueron muestreados, resultando positivos al ELISA-Ag el
    2.25% (27/1200) y a la inspección veterinaria el 0.08%
    (1/1200). En la carcaza del bovino positivo a la
    inspección veterinaria se evidenció un cisticerco
    en cada uno de los siguientes músculos: semitendinoso,
    masetero externo, músculos del cuello, oblicuo abdominal
    interno, ilyaco lumbar, aductor y bíceps femoral. Esta
    in•estigación permitió determinar que la zonas
    de origen de los bovinos positivos a C. bovis eran las
    poblaciones de Riobamba, Guaote y Guano, en la provincia de
    Chimborazo, y Ambato en la provincia de
    Tungurahua.

    Summary.
    The objective of this work is to determine the precedence of C.
    bovis and its major influence zones related to slaughtered
    bovines of the Riobamba Municipal Slaughterhouse (RMS) province
    of Chimborazo – Ecuador . it was made a comparison between
    two diagnostic methods, ELISA – Ag technique and the
    veterinary inspection. Cuts where made in the heart, diaphragm,
    esophagus and maceteros muscles. During the operation at the RMS
    1200 bovines were taken as a random sample, giving positives
    results to the ELISA – Ag 2.25% (27/1200). The veterinary
    inspection gave 0.08% (1/1200). The veterinary inspection of the
    positive bovine corps showed C. bovis in each of the following
    muscles: semitendinoso, external masetero, muscles of the neck,
    oblique abdominal internal, lumbar iliaco, adductor and the
    femoral biceps. The major influence zones for the positive
    bovines were: Riobamba, Guaote and Guano in the province of
    Chimborazo and Ambato in the province of
    Tungurahua.

    Key words: Cysticercus bovis, Taenia saginata,
    Prevalencia, Riobamba Ecuador.

    6.
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    Agradecimientos
    Nuestros más sinceros agradecimientos a las siguientes
    instituciones,
    sin las cuales no hubiera sido posible la realización de
    este trabajo:
    UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR. Facultad de Medicina Veterinaria
    y Zootecnia
    Proyecto
    Piloto para el estudio del Complejo Teniasis –
    Cisticercosis en los Andes del Ecuador.
    Camal Frigorífico Municipal de Riobamba
    Instituto de Higiene "Leopoldo
    Izquieta Pérez" – Riobamba

     

     

     

     

    Autor:

    Christian Vinueza

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