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Propagación vegetativa:




Enviado por dtaiariol78



    1. Bases fisiológicas de la
      iniciación de raíces
      adventicias
    2. Efecto de las hojas sobre el
      enraizamiento
    3. Fotosíntesis de las
      estacas
    4. Factores que afectan la
      multiplicación por estacas
    5. Estado reproductivo o
      vegetativo
    6. Sustratos para el
      enraizamiento

    La historia de la producción vegetal se ha caracterizado por
    el desarrollo de
    tecnologías de avanzada que facilitan y optimizan la
    propagación vegetativa. La posibilidad de controlar el
    ambiente (uso
    de nieblas, calefactores, termostatos, serenos, etc), amplia el
    espectro de especies que pueden seleccionarse y multiplicarse de
    esta forma (Marsden, 1955).

    La propagación vegetativa o asexual se utiliza
    para producir una planta que posea el mismo genotipo que la
    planta madre (planta donadora) y esto es posible porque todas las
    células
    de una planta poseen la información necesaria y/o suficiente para
    reproducir la planta entera (Hartmann et al., 1992).

    En la multiplicación por estacas solo es
    necesario que un nuevo sistema de
    raíces adventicias se desarrolle, ya que la estaca posee
    yemas con aptitud potencial para desarrollar nuevos
    vástagos (Hartmann et al., 1992).

    Las raíces adventicias son de dos tipos:
    raíces preformadas y raíces de herida (inducidas).
    Las raíces preformadas se forman naturalmente durante los
    primeros periodos de desarrollo del vástago, pudiendo
    emerger antes de la realización de estacas o permaneciendo
    en dormición hasta que se realicen las mismas y sean
    colocadas en condiciones ambientales favorables. Las
    raíces de herida desarrollan sólo después
    que la estaca es cortada, por efecto de la herida producida en la
    preparación de la misma. Estas raíces, son
    consideradas como formadas de novo (nueva
    formaciión)(Davies y Hartmann, 1988)

    Cuando se prepara una estaca, las células
    más cercanas a la superficie son lesionadas y expuestas,
    comenzando la respuesta de cicatrización de la herida
    (Cline y Neely, 1983). En el proceso de
    regeneración de raíces, ocurren los siguientes tres
    pasos:

    – A medida que las células externas, lesionadas,
    se mueren, se forma una lámina necrótica
    que

    sella la herida con un material suberoso y se tapona el
    xilema con gomas. Esta lámina ayuda a

    proteger la superficie del corte de desecamientos y
    patógenos.

    – Por detrás de la lámina, células
    vivas comienzan a dividirse después de algunos días
    y una capa de células parenquimatosas (callo), forma una
    peridermis.

    – Ciertas células, en la vecindad del cambium
    vascular y floema, comienzan a dividirse e

    inician la formación de raíces
    adventicias.

    Bases
    fisiológicas de la iniciación de raíces
    adventicias:

    Varias clases de reguladores de crecimiento, tales como
    auxinas, cytokininas, giberelinas y etileno e inhibidores, como
    el ácido abscísico y fenólico, influyen
    sobre la iniciación de raíces. De ellas, la auxina
    es la que tiene el mayor efecto sobre la formación de
    raíces en estacas (Hartmann et al., 1992).

    Efecto de las hojas
    sobre el enraizamiento:
    (Hartmann et al., 1992)

    Es ampliamente conocido que la presencia de las hojas en
    la estaca, ejerce una fuerte influencia, estimulando la
    iniciación de raíces.

    La traslocación de carbohidratos
    desde las hojas sin duda contribuye, a la formación de
    raíces, sin embargo, la mayor promoción del enraizamiento por efecto de
    las hojas y yemas, es posiblemente resultado de otros factores
    más directos (Breen, 1974). Hojas y yemas, son conocidas
    como poderosos centros productores de auxinas, y los efectos son
    observados directamente por debajo de ellos, demostrando el
    transporte
    polar, desde el ápice a la base. Estacas de ciertas
    especies son fácilmente enraizadas, mientras que estacas
    de otras enraízan con mayor dificultad.

    Fotosíntesis de
    las estacas:

    La fotosíntesis de las estacas no es un
    requerimiento absoluto para la formación de raíces.
    Esto puede ser observado en estacas con muchas hojas, que se
    llevan a un sitio oscuro y con estacas deshojadas
    (nofotosíntetizantes), que enraízan (Davis y
    Potter, 1981). Pero puede generalizarse que, la fotosíntesis en estacas, es probablemente
    más importante después de la iniciación de
    raíces y ayudaría en el desarrollo y crecimiento
    más rápido de las raíces (Davis,
    1989).

    Factores que afectan la
    multiplicación por estacas:

    Diferencias entre plantas
    individuales procedentes de semilla:

    Al enraizar estacas tomadas de plantas individuales de
    una especie, que de ordinario se propaga por semillas, la
    experiencia ha demostrado que pueden existir amplias diferencias
    entre estacas tomadas de ellas (efectos y/o variabilidad del
    genotipo )(Hartmann et al., 1992).

    Diferencias entre las zonas apicales y básales
    de la rama:
    (Hartmann et al., 1992)

    En la composición química de las ramas
    hay marcadas diferencias de la base a la punta. En las estacas
    tomadas de distintas partes de las ramas en ocasiones se observa
    variabilidad en la producción de raíces y en muchos
    casos el mayor porcentaje de enraíce se obtiene en estacas
    procedentes de la porción basal de la rama.

    Puede ocurrir que en tallos de un año o
    más de edad, los carbohidratos se hayan acumulado en la
    base de las ramas y tal vez se han formado algunas iniciales de
    raíz, posiblemente bajo la influencia de sustancias
    promotoras de raíces procedentes de yemas y de hojas, y
    por lo tanto el mejor material para estacas puede provenir de la
    porción basal de esas ramas.

    Pero, el mejor enraizamiento de las estacas apicales
    podría explicarse por la posibilidad de que en el
    ápice se encuentre una mayor concentración de
    sustancias endógenas promotoras del enraizamiento ya que
    las mismas se originan en las secciones apicales (yemas
    apicales). También, las estacas apicales son más
    jóvenes y en consecuencia, hay más células
    capaces de volverse meristemáticas. En las especies que
    enraízan fácilmente, este factor es de poca
    importancia, cualquiera sea la posición de la estaca en la
    rama.

    Estado reproductivo o
    vegetativo:

    En la mayoría de las plantas se pueden hacer
    estacas de ramas en condición vegetativa o en
    condición reproductiva. Nuevamente, en especies que
    enraízan fácilmente no existen grandes diferencias
    entre distintos estados fenológicos en que se encuentre la
    planta, pero en especies que enraízan con dificultad,
    éste puede ser un factor de importancia. Por ejemplo, en
    dalia, las estacas que portan yemas florales tienen mayor
    dificultad para enraizar que las estacas que tienen solamente
    yemas foliares (Biran y Halevy, 1973).

    Sustratos para el
    enraizamiento:

    Hay diversos medios y
    mezclas de
    éstos que se usan con el fin de hacer enraizar estacas.
    Para obtener buenos resultados se requieren las siguientes
    características (Richards; Warneke y
    Aljibury, 1964):

    – El medio debe ser lo suficientemente firme y denso
    para mantener las estacas en su sitio durante el enraíce;
    su volumen no debe
    variar mucho, ya sea seco o mojado; resulta perjudicial que tenga
    un encogimiento excesivo al secarse.

    – Debe retener la suficiente humedad para que no sea
    necesario regarlo con mucha frecuencia.

    – Debe ser lo suficientemente poroso, de modo que se
    escurra el exceso de agua y permita
    una aireación adecuada.

    – Debe estar libre de malezas, nemátodos y otros
    patógenos.

    – No debe tener un nivel excesivo de
    salinidad.

    – Debe poderse esterilizar con vapor o químicos
    sin que sufra efectos nocivos.

    – Debe existir una adecuadada provisión de
    nutrientes para todo el período, aunque suplementaciones
    con fertilizantes de lenta liberación son frecuentemente
    recomendados.

    Un medio ideal de propagación, debe estar
    provisto de suficiente porosidad para permitir una buena
    aireación y una alta capacidad de retención de
    agua, debe tener un buen drenaje y estar libre de
    patógenos (Hartmann et al., 1992).

    Arena:

    La arena está formada por pequeños granos
    de piedra, de alrededor de 0.05 a 2 mm de diámetro,
    dependiendo su composición mineral de la que tenga la roca
    madre. En propagación, generalmente, se emplea arena de
    cuarzo. De preferencia se debe fumigar o tratar con calor antes de
    usarla para esterilizarla. Virtualmente no contiene nutrientes
    minerales y no
    tiene capacidad amotiguadora (Buffer) o capacidad de intercambio
    cationico. Casi siempre se usa en combinación con
    algún material orgánico (Hartmann et al.,
    1992).

    Turba:

    La turba se forma con restos de vegetación
    acuática, de marismas, ciénagas o pantanos, que se
    ha preservado bajo el agua en un
    estado de
    descomposición parcial.

    La turba de pantanos esta formada por restos de pastos,
    juncos y otras plantas de pantanos. Este tipo de turba es
    variable en su composición y color. Su
    pH
    varía alrededor de 4 a 7.5 y su capacidad de
    retención de humedad es de 10 veces su peso seco (Hartmann
    et al., 1992).

    Humus de lombriz:

    El humus de lombriz con forma de restos vegetales,
    restos animales (no
    deben utilizarse crudos) y restos domiciliarios orgánicos,
    que acumulados, forman un compost, y con el agregado de lombrices
    que digieren la materia
    orgánica, resulta en un producto
    final, llamado vermicompuesto, semejante al humus, atóxico
    para los vegetales y excelente mejorador de suelos.

    Algunas características del humus de lombriz
    modifican las propiedades físico – químicas y
    microbiologicas del suelo: a)- le
    comunica al suelo mayor porosidad y aireación, mejorando
    también la infiltración y favoreciendo el
    desarrollo radical; b)- se liberan gradualmente los nutrientes
    que las plantas necesitan, pues al mantener el pH dentro de un
    rango cercano a la neutralidad (6-7)( con gran poder buffer)
    , les permite una mayor solubilidad. El tenor de microelementos:
    Cu, Mn, Mo y Zn, es elevado; c)- contiene los mismos
    microorganismos benéficos que tiene el suelo, pero en
    mayor cantidad, destacándose los que transforman la
    celulosa y los que intervienen en la asimilación de
    nitrógeno y fósforo; d)- aumento de la velocidad de
    emergencia de las plántulas; e)- permite una larga
    permanencia de ciertos hongos
    benéficos del suelo. Estos microorganismos que suelen ser
    efectivos para controlar hongos dañinos del suelo, suelen
    tener en él poca durabilidad. El humus de lombriz les
    permite un buen desarrollo tórnadolo efectivo en la lucha,
    por ejemplo contra dampig off ( Mirabelli, 1995).

    Mezclas de suelo para cultivo en maceta:(Hartmann
    et al., 1992)

    En los sistemas de
    propagación, las estacas enraizadas algunas veces se
    plantan directamente en el campo, pero por lo general, esto no es
    satisfactorio para la sobrevivencia de las mismas, por ello con
    frecuencia se les inicia en una mezcla de suelo en diversos
    recipientes.

    Para lograr mezclas de suelo más uniformes y de
    mejor textura para macetas, a veces se añade arena a
    la tierra y
    algo de materia orgánica, en forma de turba, viruta de
    madera o
    corteza desmenuzada. También se usan otras mezclas, sin el
    agregado de tierra, para
    la propagación y cultivo de plantas. Pueden citarse
    mezclas de turba y perlita o turba y arena, pero al ser pobres en
    nutrientes, necesitan el agregado de fertilizantes. El humus de
    lombriz puede utilizarse satisfactoriamente por todas las buenas
    características que presenta.

    BIBLIOGRAFÍA:

    Biran, L. and A. H. Halevy. 1973. The
    relationship

    between rooting of dahlia cuttings and the presence and
    type of bud. Phys. Plant. 28:244-47

    Breen, P. J. and T. Muraoka. 1974. Effect of leaves and
    carbohydrate content and movement of 14C- assimilate in plum
    cuttings. Jour. Amer. Soc.

    Hort. Sci. 99(4):326-32.

    Cline, M. N., and D. Neely. 1983. The histology and
    histochemistry of the wound healing process in

    geranium cuttings. Jour. Amer. Soc. Hort.
    Sci.

    108:452-96.

    Davies, F. T., Jr., and H. T. Hartmann. 1988. The
    physiological basis of adventitious root formation. Acta Hort.
    227:113-20.

    Davis, T. D. 1989. Photosynthesis during adventitious
    rooting. In Adventitious root formation in cuttings, T. D. Davis,
    B. E. Haissig, and N.

    Sankhla, eds. Portland, Oreg.: Dioscorides
    Press.

    Davis, T. D., and J. R. Potter. 1981. Current
    photosyntate as a limiting factor in adventitious root formation
    in leafy pea cuttings. Jour. Amer.

    Soc. Hort. Sci. 106:278-82.

    Hartmann, H.T.; D.E. Kester and F.T. Davies. Plant
    Propagation. Principles and Practices. Fifth

    Edition. 1992.

    Marsden, M. E. 1955. The history of vegetative
    propagation. Rpt. 14th Inter. Hort. Cong., Vol.

    2, pp. 1157-64.

    Mirabelli, E. 1995. Curso intensivo de
    lombricultura.Centro de lombricultura. Facultad de
    Agronomía

    (UBA).

    Richards, S. J., J. E. Warneke, and F. K. Aljibury.
    1964. Physical properties of soil mixes used by nurseries. Calif.
    Agr. 18(5):12-13.

     

     

     

    Autor:

    Darío Rubén Taiariol. Ingeniero
    Agrónomo.

     

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