Los recursos fitogenéticos andinos:
Su erosión, conservación y apropiación

1. Colecciones.
2. Orígenes de las plantas cultivadas
3. Centros de diversidad.
4. Especies domesticadas en la zona andina
5. Valor nutritivo
6. Erosión genética
7. Conservación de los recursos filogenéticos
8. Apropiación de la biodiversidad
9. Los recursos fitogenéticos y la propiedad intelectual
10. Bibliografía
11. Anexo

El Perú, tiene un territorio extremadamente heterogéneo con diversidades biológicas, ecológicas climáticas y culturales de primer orden.

Oner (1976) basado en el Sistema Holdridge clasifica en 84 zonas de vida de las 104 que existen en el mundo.

Senamhi (1977) según el Sistema Thornthwaite indica que en el Perú existen 28 tipos de climas de las 32 que existe en el Planeta.

Pulgar Vidal (1941) clasifica el país en ocho regiones naturales: Costa o Chala (0 - 500), Yunga (500 - 2300), Quechua (2300 - 3500), Jalca o Suni (3500 - 4000), Puna (4000 - 4800) Janca o Cordillera (más de 4800), Selva Alta o Rupa Rupa (2000 - 500), Selva Baja o Omagúa (500 - 0); como consecuencia de esta heterogeneidad, la diversidad biológica del Perú se encuentra dentro de los 5 más ricos del mundo.

Las especies de plantas "domesticadas" durante la época pre-hispánica son más de 155, lo que convierte al país en el MAYOR CENTRO DE ESPECIES DOMÉSTICAS del mundo. Algunos de ellos se han extendido por todo el mundo: Papa, Maíz, Frijol, Camote, Tomate, etc.

Se conoce cerca de 1200 especies silvestres de plantas útiles para diversos fines: alimentación, medicamentos, condimentos, saborizantes, colorantes, perfumes, fibras, aceites, estimulantes.

Algunos especialistas sostienen que el Perú posee entre 40 y 50 mil especies de flora, de las cuales apenas se han descrito la mitad y cada año se descubren nuevas especies de gran interés económico y social.

Es oportuno indicar que el agua, suelo y los Recursos Fitogenéticos constituyen la base alimentaria mundial. Los Recursos Fitogenéticos están formado por la diversidad del material genético que contiene las variedades tradicionales, las variedades mejoradas y las plantas silvestres afines de los cultivos.

Los Recursos Fitogenéticos proporcionan los genes que debidamente utilizados y combinados por el hombre permiten obtener nuevas variedades de plantas de alta productividad, resistentes a plagas, enfermedades y condiciones adversas ya sea sequías, heladas, inundaciones, suelos pobres, salinidad, alcalinidad, etc.

Estos recursos, se han constituido en la despensa de la humanidad y su pérdida es una grave amenaza para la seguridad alimentaria del planeta.

La domesticación de nuestros principales cultivos comenzó hace 10000 años, desde aquellos tiempos, se han ido acumulando enormes reservas de variación genética debido a los procesos de mutación, segregación y selección tanto natural como artificial bajo distintas condiciones ecológicas. La conservación y la creación de la diversidad no solo es un proceso espontáneo sino también han intervenido millones de hombres y mujeres en milenios.

Las poblaciones naturales poseen un enorme reservorio de variabilidad genética.

La mayoría de los cambios evolutivos se producen por acumulación gradual de mutación génicas o de punto.

La adaptación evolutiva adopta las modificaciones beneficiosas y rechaza las perjudiciales; como resultado de las modificaciones beneficiosas se irán extendiendo a todos los miembros de la población y en el transcurso de las generaciones los tipos dominantes serán reemplazados.

1. COLECCIONES.

Dada la importancia de la diversidad fitogenética se ha realizado colecciones y estudios científicos desde hace milenios; uno de los primeros jardines del mundo, fue una colección de plantas medicinales de la China, sembrada por orden del Emperador Cheng-Nong en el año 2,800 a. C. (Shengji; 1984:7).

Mientras la península Ibérica estuvo gobernada por los Moros en el siglo X y XI se sembraron varios hermosos jardines alrededor de los Palacios; los Califas y Sultanes musulmanes enviaban recolectores hasta la India para recoger plantas y semillas raras con la finalidad de sembrarlas en sus hermosos e inmensos jardines en Medina - Asahara - Córdova; igualmente en Murcia, Toledo y Sevilla; estos jardines establecidos por los Moros servían para el estudio, inspiración y el placer.

El Papa Nicolás V ordenó sembrar una parcela de plantas medicinales en el Vaticano en el año de 1,447. El jardín des Plantes se instaló en París en el año 1,626; en 1,621 el jardín Oxford, en 1,670 Edimburgo y en Leningrado en 1,714.

Los franceses fueron responsables del primer jardín botánico en zonas tropicales que se construyó en el año 1,735 en Mauricio Pamplemdusses. El Royal Botanic Garden en Kew Londres se instaló en 1,739; durante dos siglos este jardín reunió alrededor de 50 mil especies de casi todos los países del mundo; a menudo ayudaban a otros jardines botánicos del Imperio Británico.

Los holandeses instalaron un jardín de aclimatación en Bogur Java en 1,817, para estudiar el germoplasma exótico, en Sri Lanka en 1812 y en Singapur en 1859 que daban mayor énfasis a las plantas de interés económico como: CAFÉ (coffea arabica), QUINUA (Cinchona succiruba), TOMATE (Lycopersicum asculentum), CHIRIMOYA (Annona cherimolia), CACAO (Tehobroma cacao) y el caucho (Hevea brasilensis). La historia del caucho se ha convertido para algunas personas en uno de los capítulos más infames de la historia de Kew. Hay quienes consideran a los jardines botánicos como Kew, como meros instrumentos de poder colonial para obtener recursos naturales de los países del Tercer Mundo.

Nuestros Incas construyeron en Chicheros - Cuzco, el "Anfiteatro" de Moraya con el Objeto de estudiar la aclimatación de diferentes especies vegetales.

2. ORÍGENES DE LAS PLANTAS CULTIVADAS

Alfonso de Candolle (1,882) en su obra "Orígenes de las plantas cultivadas" cita cinco métodos para hallar el origen de las plantas:

• Método Botánico
• Método Histórico
• Método Lingüístico
• Método Arqueológico, y
• Método Paleontológico.

Después de estudiar 247 especies del Viejo y Nuevo Continente, intentó averiguar el origen de las plantas cultivadas y concluyó: "Si en una región, zona o país existe una determinada especie de planta cultivada, la cual cuenta con especies silvestres y parientes cercanos; podemos emitir la hipótesis que la planta es originaria de esa región o país".

Nicolai Vavilov (1926-1951), uno de los más grandes investigadores sobre geografía y genética de las plantas cultivadas, como resultado de sus numerosos viajes de exploración; la amplitud de sus colecciones y la minuciosidad con que fueron estudiadas, concluyó que la "Distribución de las especies vegetales en el planeta no es uniforme".

Vavilov realizó detallados estudios que resumiremos:

• Las colecciones de plantas, fueron ordenadas en grupos genéticos basados en caracteres morfológicos.
• Realizó investigaciones sobre genética, citología y patología.
• Llevó a cabo una detallada determinación de la variación de los caracteres morfológicos y fisiológicos de cada especie o raza.
• Con esta información botánica y los datos climatológicos, ecológicos y geográficos obtenidos en las áreas de colección Vavilov ha interpolado las áreas ocupadas por las colecciones en el pasado.

Luego de estos estudios concluyó: "La existencia de una gran concentración y diversidad de formas heredables y así como la de ciertos caracteres endémicos, la presencia de formas silvestres estrechamente relacionadas entre sí, son evidencia del probable CENTRO DE ORIGEN".

2. CENTROS DE DIVERSIDAD.

1. CENTRO CHINO. Comprende las regiones montañosas de China Central y Occidental.

• Cebada sin arista.
• Cebolla, Col china, Rábano.
• Pera, Manzana, Melocotón.
• Cañamo.

1. CENTRO INDIO.

1. Centro principal (Este de la India, Nepal, Bangladesh).

• Arroz, Garbanzo.
• Mango, Naranja, Mandarina.
• Caña de Azúcar, Algodón Oriental.
• Canela.

1. Centro Indio - Malayo (Filipinas, Malasia, Indonesia, Tailandia, Camboya, Vietnam)

• Plátano, Pomelo (Toronja), Coco.
• Arroz.

1. ASIA CENTRAL. (Noreste de India, Afganistán, Norte de Pakistán, Turquestán, Uzbekistan).

• Trigos hexaploides.
• Lenteja, Haba, Arveja, Lino.
• Zanahoria, Espinaca.
• Uva, Manzana.

1. CENTRO CERCANO ORIENTE (Norte de Irán, Irak, Turquía, Siria, Asia Menor).

• Trigo: T. orientalis, T. turgidum, T. persicum, T. durum, T. timopheevi, T. monococum.
• Cebada dos hileras.
• Centeno, Avena Bizantina, Avena sativa.
• Alfalfa, Frejol.
• Higo, Membrillo, Pera, Cereza.

1. CENTRO MEDITERRÁNEO (Costas del Mar Mediterráneo)

• Trigo: T. polonicum, T. dicocum.
• Avena Brevis, Avena, Bizantina.
• Trébol Blanco, Trébol Encarnado.
• Lino, Olivo.
• Lechuga, Espárrago, Apio, Nabo, etc.

1. CENTRO ABISINIO (Etiopía, Norte de Kenya, Oeste de Somalia)

• Cebada de seis hileras.
• Trigo: T. durum, T. turgidum, T. polonicum (Abyssinico).
• Sorgo, Migo.
• Café, Sésamo, Ricino.

1. CENTRO MEXICANO - CENTRO AMERICANO (Centro y Sur de México, Guatemala, Honduras y Costa Rica).

• Maíz, Frijol, Amaranthus.
• Calabaza, Pimiento, Ají.
• Algodón (Gossypium hirsutum) Agave.
• Guayaba, Papaya, Cacao.

1. ESPECIES DOMESTICADAS EN LA ZONA ANDINA

El Sub Centro Principal del Centro Sudamericano lo conforman los países de la zona andina, (Venezuela Colombia Ecuador Perú Bolivia) que es una de las más ricas en diversidad del planeta. Las especies originarias de esta zona son muchas y de importancia:

FRUTAS:

• Granadilla (Passiflora ligularis)
• Poro poro o tumbo (Passiflora mollisima)
• Maracuya (Passiflora edulis)
• Lucma (Pauteria lucuma)
• Chirimoya (Annona chirimolia)
• Capulí o quinda (Prunus capulí)
• Pacay (Inga heteroptera)
• Guanábana (Annona muricata)
• Tomatillo o capulí (Physalis peruviana)
• Guayabo (Psidium pyryterum)
• Papaya (Carica papaya)
• Tuna (Opuntia ficus indica)
• Naranjilla o Lulo (Solanum sp.)
• Papayo de olor ( Carica pubescens)
• Pitajaya o gigantón (Trichocereus peruvianus)
• Zarzamoras (Rubus roseus)
• Nogal (Junglans neotrópica)
• Sacha Tomate (Cyphomandra betacea)
• Palta (Persea americana)

CEREALES:

• Quinua (Chenopodium quinoa)
• Kiwicha o coyo (Amaranthus caudatus)
• Tarwi o Chocho (Lupinus mutabilis)
• Cañihua (Chenopodium pallidicauli)
• Maíz Amiláceo (Zea mays)

LEGUMINOSAS:

• Frijol (Phaseolus vulgaris)
• Ñuña (Phaseolus vulgaris)
• Pallar (Phaseolus lunatus)
• Pajuro (Erytrina edulis)
• Maní (Arachis hypogea)

TUBÉRCULOS Y RAÍCES:

• Papa (Solanun sp.)
• Oca (Oxalis tuberosa)
• Olluco o Ulluco (Ullucus tuberosus)
• Mashua o Izaño(Tropaeolum tuberosum)
• Camote (Ipomea batata)
• Arracacha (Arracacia xanthorrhize)
• Llacón o Yacón (Polymnia sonchifolia)
• Chago o Mauka (Mirabilis expansa)
• Maca (Lepidium meyenii)
• Achira (Canna edulis)
• Ñame o Sache popo (Dioscore elata)
• Pituca (Colocasia esculente)

HORTALIZAS:

• Ají (Capsium annum)
• Rocoto (Capsium pubescens)
• Culantro o cilantro (Cariandrum sativum)
• Huacatay (Tagetes elliptico)
• Paico (Chenopodium ambrosoides)
• Tomate (Lycopersicum esculentum)
• Orégano (Oréganum vulgare)

ESTIMULANTES:

• Coca (Erythoxylium coca)
• Ayahuesca (Banisterio caapi)
• Chamico (Datura estramonium)
• Quina (Cinchona sp.)

• Cacao (Theobroma cacao)

• Tabaco (Nicotina tabacum)

Así mismo se tiene una lista larga de plantas medicinales, aromáticas, todavía no estudiadas sistemáticamente, que no incluiremos en este documento.

Conocida la enorme lista de especies originarias de esta zona, queremos resaltar la variabilidad intraespecifica de algunas especies de importancia como: papa, (Solanun sp.), tomate (Lycopersicum sp.).

Dentro de las especies del género Solanum (papa) existe una gran variabilidad intraespecífica con tolerancia a algunas plagas y enfermedades citaremos las mas importantes:

Resistentes a Phytophthora infestan (rancha)

Especies cultivadas:

• Solanum stonotomum (diploide)
• S. phureja (diploide)
• S. andigena (tetraploide)
• S. tuberosum (tetraploide).

Entre las especies silvestres tenemos:

• S. cardiophyllum (2x, 3x)
• S. politricon (4x)
• S. stoloniferum (4x)
• S. bulbocastanum (2x, 3x)
• S. avilesii
• S. hougassi
• S. acaule
• S. andreanum
• S. brachistotrichum
• S. brachicarpum
• S. microdontum
• S. oplacence
• S. sparsipilum
• S. verrucosum
• S. sucrense
• S. tarijense
• S. toralapanum
• S. boliviense
• S. chacoense

Resistentes a Pseudomonas solanacearum (marchités bacteriana).

Especies cultivadas:

• S. phureja (diploide)
• S. stonotomum (diploide)
• S. tuberosum (tetraploide)

Especies silvestres:

• S. bulbocastanum (2x, 3x)
• S. chacoense (2x, 3x)
• S. jamesii (2x)
• S. stoloniferum (4x)
• S. sparsipilum (2x)
• S. pinnatisectum
• S. acaule
• S. microdontum
• S. brevidins
• S. berthaultii
• S. sucrense
• S. boliviense

Resistente a heladas:

Especies cultivadas:

• S. acaule (2x)
• S. ajanhuiri (2x)
• S. juzepczukii (3x)
• S. andigena (4x)
• S. curtilobum (5x)
• S. phureja (2x)

Especies silvestres:

• S. bukasovii (2x)
• S. chomatophylum (2x)
• S. multisetum
• S. vernie (2x)
• S. commersonii (2x, 3x)
• S. ventura
• S. acaule
• S. megistacrolobum
• S. toralapanum
• S. paucissectum
• S. brevidens

Resistente a sequias:

• S. sparsipilum
• S. spegazzinii
• S. weberbauri
• S. gandarillasii
• S. leptophyes
• S. ambrosinum
• S. microdontum
• S. polycrichon
• S. megistacrolobum
• S. papita

Resistente a Alternaria solani (Tizón temprano)

Especies silvestres:

• S. bulbocastanum (2x, 3x)
• S. chacoense (2x, 3x)
• S. taralaplanum (2x)

Resistente a Empoasca fabae (Cigarritas verdes):

Especies silvestres:

• S. chacoense (2x,3x)
• S. commersonii (2x, 3x)
• S. jamesii (2x)
• S. polyadenium (2x)
• S. stoloniferum (4x)

Resistente a Glododera padilla (Nemótodo del quiste):

Especies cultivadas:

• S. juzepczukii

Especies silvestres:

• S. kurtzianum (2x)
• S. microdontum (2x, 3x)
• S. famatinoe
• S. vernie (2x)
• S. infandibuliforme (2x)

Dentro del género Lycopersicumm sp. (Tomate) también existe una gran variabilidad de especies silvestres que manifiesten resistencia a algunas plagas y enfermedades.

Resistencia a hongos:

• Lycopersicum peruvianum
• L. hirsutum
• L. pimpinellifolium

Resistentes a nematodos:

• Lycopersicum peruvianum

Resistentes a virus:

• Lycopersicum peruvianum

• L. chilense

Resistentes a insectos:

• Lycopersicum hirsutum

Adaptados a ambientes difíciles:

• Lycopersicum cheesmonii

Ejemplos similares se podrían citar para casi todos los cultivos. Este es el tesoro que podemos encontrar en nuestros Andes.

1. VALOR NUTRITIVO

Ha llamado la atención de la comunidad científica internacional el alto valor nutritivo de nuestros cultivos nativos. En análisis bromatológicos como en pruebas biológicas se ha comprobado que la calidad de proteínas y el balance de aminoácidos son muy superiores a los cultivos introducidos, como se observará en los cuadros, 1,2 y 3. Los resultados están expresados en miligramos por 100 gr de muestra, las de proteína están expresadas en porcentaje (%).

CUADRO Nº 1: COMPOSICION QUIMICA DE LOS FRUTALES NATIVOS

Nombre vulgar	Nombre científico	Proteína	Cal(mg)	Vit.C	Fósforo	Ribof.	Niacina	Tiamina
Granadilla	Passiflora ligularis	2.30	16.60	16.00	128	0.13	2.1	0.11
Poroporo	P.mollisima	2.60	12.00	53.80	---	----	---	---
Lucma	Pauteria lucuma	1.50	14.00	22.00	---	0.14	2.0	---
Capuli	Prunus capuli	1.30	22.00	20.80	---	---	---	---
Tuna	Opuntia ficus indi	0.80	65.80	16.30	---	---	---	---
Chirimoya	Annona cherimolia	1.20	20.00	3.30	63	0.16	---	0.09
Manzana*	Pyrus malus	0.30	5.00	1.30	11	0.04	0.13	0.03
Naranja*	Citrus sinensis	1.60	23.00	92.30	51	0.04	0.36	0.09

* Especies introducidas

CUADRO N° 2: COMPOSICION QUIMICA DE LAS HORTALISAS NATIVAS

Nombre vulgar	Nombre científico	Proteína	Ca	Fe	P	Ac.as	Niacin	Rivof	Tiami.
Aji	Capsicum anum	2.60	94.00	1.70	56	12	2.65	0.47	0.22
Culantro	Coriandrum sav.	3.30	259.0	5.30	---	37.2	1.86	0,27	0.68
Huacatay	Tajetes eliptica	5.00	412.0	8.70	72	17.1	1.47	0.27	0.06
Paico	Chenopodium ambrosoides	5.00	459.0	6.32	65	34.7	1.12	0.42	0.11
Espinaca*	Spinaca olerasea	1.90	80.0	4.60	40	16.4	0.65	0.25	0.08
Cebolla*	Allium cepa	1.40	20.0	0.20	45	4.9	0.22	0.06	0.03

CUADRO N° 3: COMPOSICION QUIMICA DE LOS CEREALES NATIVOS

Nombre vulg.	Nombre cient.	Proteína.	Lisina	Metionina	Triptofano.
Coyo	Amarantus caudatus	12 –18	0.80	0.30	0.15
Quinua	Chenopodium quinoa	13 –19	0.88	0.42	0.13
Tarwi- chocho	Lupinus mutabilis	23 –52	2.22	0.35	0.35
Trigo*	Triticum aesti.	8 –12	0.36	0.17	0.14
Arroz	Oryza sativa	5 –10	---	0.27	0.10

Los cuadros son bastantes elocuentes al mostrarnos las diferencias en proteínas, elementos esenciales como; Ca (calcio), P (fósforo), Fe (hierro) y aminoácidos esenciales como: niacina, rivoflamina, tiamina, lisina y tiptofano; además de estas ventajas nutritivas de nuestros recursos fitogenéticos tenemos una diversidad intra e interespecífica, que nos permite seleccionar ecotipos sobresalientes, con una buena sanidad y presentación para su exportación.

Este privilegio que tenemos, de que la zona andina sea un centro de diversidad tiene que darle el verdadero valor estratégico y potenciarlos.

2. EROSIÓN GENÉTICA

1. CONSERVACIÓN DE LOS RECURSOS FILOGENÉTICOS

Conservar los recursos fitogenéticos va mucho más allá de preservar las especies o ecotipos. El objetivo central debe ser conservar la suficiente variabilidad intraespecífica con el objeto de asegurar el pool genético de cada población.

La conservación puede realizarse tanto ex-situ como in-situ, ambos sistemas no deben considerarse opuestos sino más bien complementarios. La conservación ex-situ implica la recolección de muestras representativas de la variabilidad genética de una población y su mantenimiento en bancos de germoplasmas en diferentes formas; semillas, estacas, polen, órganos vegetativos, cultivos de meristemas y tejidos in-vitro, etc.

El cultivo de meristemas, de ápices, nudos y puntas de tallo constituyen los métodos más adecuados para la conservación de germoplasma in-vitro. Este método es útil para conservar especies que se propagan preferentemente en forma vegetativa (papa, camote, oca, recalcitrantes, olluco, arracacha, caucho, cacao, café y palto). El período de conservación depende de las especies y de las técnicas empleadas; las "colecciones básicas" o de largo plazo deben guardarse en cámaras frías a una temperatura de -18ºC, con una humedad de 5 a 7%. Las "Colecciones activas" se guardan a temperaturas de 0ºC a 10ºC con una humedad de 14% y son de corto tiempo, se usan para pruebas de evaluación, investigación y mejoramiento.

Todas las colecciones necesitan ser regeneradas si su poder germinativo está por debajo del 85%; cuando se efectúa la regeneración es recomendable sembrar más o menos la misma cantidad de semilla que se recolectó con el objeto de evitar la deriva genética o pérdida de variabilidad.

El número de semillas suficientes para conservar la variabilidad fitogenética del germoplasma es todavía un tema de discusión, pero mientras más grande sea la muestra mayor es la posibilidad de mantener la variabilidad de una población. Según HAWKES (1982) el número requerido es de 2,500 semillas o más.

La conservación in-situ tiene como principal objetivo preservar la diversidad de variedades tradicionales o nativas de las especies en su hábitat o chacra con la ayuda del conocimiento y prácticas ancestrales o tradicionales de los campesinos y/o agricultores. Es la conservación en un agrosistema dinámico que favorezca procesos evolutivos, permitiendo así la co-evolución continua entre huéspedes, parásitos y malezas; lo que probablemente produzca material resistente a plagas y enfermedades. Para muchos investigadores es la mejor manera de conservar los recursos, pues no se detiene su proceso evolutivo, en cambio en la conservación ex-situ, se detiene su evolución. En las cámaras frías existe la posibilidad de error en el manejo del material y el riesgo de cambios genéticos cuando las semillas se siembran y se someten a condiciones ambientales distintas a las del lugar en que eran originalmente cultivadas.

Los organismos se adecúan notablemente al ambiente en que viven, presentando una morfología, fisiología y comportamiento que han sido cuidadosamente y hábilmente diseñado por la naturaleza para capacitar a cada organismo a adaptarse al mundo que lo rodea y pueda subsistir en él.

Para conservarse toda la población o variedad debe mantenerse adaptada por medio de alteraciones en su estructura genética en respuesta a los inevitables cambios del medio. La distinta estructura genética de los seres vivos sometidos a la selección natural determina una diferente capacidad de dejar descendientes (eficiencia biológica).

Los cambios geneticos no producen en muchos casos cambios fenotipicos-morfologicos inmediatamente ya que el fenotipo no es la expresión directa del genotipo.

2. APROPIACIÓN DE LA BIODIVERSIDAD

Desde Marco Polo y Cristóbal Colón que abrieron las compuertas de Oriente y Occidente las riquezas no acaban de drenar. Esta América pauperizada es saqueada para beneficiar a compañías transnacionales y centros de investigación, mientras tanto nosotros después de donar nuestras semillas tenemos que comprar a precios onerosos con otras etiquetas de variedades, mejoradas o simplemente patentadas por los piratas de la biodiversidad.

Por supuesto que los beneficios económicos quedan en los países industrializados, sin ningún tipo de retribución para los países dueños de los recursos, ni mucho menos a los campesinos y agricultores que por milenios han preservado los recursos fitogenéticos. , Los países industrializados tienen almacenados en sus bancos de germoplasma la mayor parte de los recursos fitogenéticos como nos ilustran los cuadros; 4, 5, 6, y 7:

CUADRO Nº 4: PRINCIPALES PAÍSES E INSTITUCIONES QUE MANTIENEN EN SUS BANCOS LA DIVERSIDAD DE PAPA (Solanum sp.).

N° DE ACCESIONES	PAÍS	LOCALIDAD	INSTITUCIÓN
9435	Rusia	Leningrado	VIR
6500	Perú	Lima	CIP*
5000	Brasil	Brasilia	CENARGEN
4286	Reino Unido	Birmingan	UV
4000	México	Toluca	INIA
2800	EEUU	Wisconsin	IRPIS

CUADRO N°5: PRINCIPALES PAÍSES E INSTITUCIONES QUE MANTIENEN EN SUS BANCOS LA DIVERSIDAD DE FRIJOL ( Phaseolus sp.)

N° de Accesiones	País	Localidad	Institución
39790	Colombia	Cali	CIAT*
9321	EEUU	Pullman-Washington	WRPIS
8900	México	Chapingo	INIA
5000	Reino Unido	Cambrid	CU
4456	EEUU	Fort Collins – Colorado	NSSL
2202	Brasil	Goias	EMBRAPA

CUADRO N°6. PRINCIPALES PAÍSES E INSTITUCIONES QUE MANTIENEN EN SUS BANCOS LA DIVERSIDAD DE MAÍZ (Zea mays)

N° de Accesiones	País	Localidad	Institución
15084	Rusia	Leningrado	VIR
10475	México	El Batan	CIMMYT*
9988	México	Chapingo	INIA
6044	EEUU	Fort Collins Colorado	NSSL
5144	Colombia	Medellín	ICA
5000	China	Beijing	ICER

CUADRO N° 7 PRINCIPALES PAÍSES E INSTITUCIONES QUE MANTIENEN EN SUS BANCOS DE DIVERSIDAD DE TRIGO (triticum sp.)

N° de Accesiones	País	Localidad	Institución
74500	Rusia	Leningrado	VIR
39003	EEUU	Bellsville-Maryland	EVADA
37477	EEUU	Fort Collins Colorado	NSSL
31144	México	El Batan	CIMMYT*
31000	Israel	Bet Bagan	ARO
26000	Italia	Bari	IG

CUADRO N° 8 PRINCIPALES PAÍSES E INSTITUCIONES QUE MANTIENEN EN SUS BANCOS DE DIVERSIDAD DE ARROZ (oryza sp.)

N° de Accesiones	País	Localidad	Institución
78800	Filipinas	Los Baños	IRRI*
18065	EEUU	Fort Collins Colorado	NSSL
18000	Japón	Tsukuba	NIRA – CIAT*
13050	India	Cuttack	CRRI
13511	Indonesia	Bogor	CRIFC
11230	EEUU	Bettsville-Maryland	EUADA

CUADRO N° 9 PRINCIPALES PAÍSES E INSTITUCIONES QUE MANTIENEN EN SUS BANCOS DE DIVERSIDAD DE CEBADA (hordeum sp.)

Nro. de Accesiones	País	Localidad	Institución
25284	EEUU	Fort Collins – Colorado	NSSL
23371	EEUU	Beltsville – Maryland	EUADA
21000	Canadá	Ottawa	PGRO
19500	Brasil	Passo Fundo	CNPT
17459	Rusia	Leningrado	VIR
14215	Siria	Aleppo	ICARDA*

CUADRO N° 10 PRINCIPALES PAÍSES E INSTITUCIONES QUE MANTIENEN EN SUS BANCOS DE DIVERSIDAD DE CAMOTE (Ipomea batata)

Nro. de Accesiones	País	Localidad	Institución
1243	Perú	Lima	CIP*
1200	Indonesia	Bogor	NBT
1200	Japón	Kodoshima	KNAES
1200	Taiwan	Taiwan	AVRDC
1000	Nigeria	Ibadan	IITA*

CUADRO N° 11: PRINCIPALES PAÍSES E INSTITUCIONES QUE MANTIENEN EN SUS BANCOS DE DIVERSIDAD DE FRIJOL LIMA (Phaseolus lunatus)

Nro. de Accesiones	País	Localidad	Institución
3842	Indonesia	Bogor	NBT
2527	Colombia	Cali	CIAT*

* Centro Internacional

Los cuadros 4,5 y 6; nos indican que ninguna institución de nuestro país conserva nuestra rica variabilidad fitogenética. A pesar de que el 82% del germoplasma que mantiene el CIP proviene de los andes peruanos (Huamán: 1982). Asimismo, el Proyecto NRSP-6 (Winconsin) aloja la más grande colección de semilla de papa silvestre del mundo (Estrada N. 1996).

CUADRO N° 12: ESPECIES SILVESTRES DE PAPA EN BANCOS DE GERMOPLASMA

Banco	Especies	Clones
Proyecto NRSP-6 (Winsonsin, EEUU)	102	1305
Otros Bancos: CIR Holanda, Alemania, Escocia, Brasil, Colombia, Argentina.	65	800

Es preciso destacar que el CENARGEN-Brasil, INIA-México e ICA de Colombia conservan una cantidad apreciable de la variabilidad de papa; maíz y frijol en sus bancos de germoplasma. Sería saludable seguir los pasos de estos tres países hermanos latinoamericanos y no seguir siendo tan dependientes de los países del norte o centros internacionales, concientizando a nuestros investigadores y gobernantes que podemos darle a nuestros recursos genéticos el verdadero valor científico y estratégico que se merecen.

3. LOS RECURSOS FITOGENÉTICOS Y LA PROPIEDAD INTELECTUAL

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