Objetivo

El fin de este Crucero es observar si existe influencia del estero Litril en las concentraciones de los parámetros medidos en la bahía Coliumo.

Materiales y Métodos

Durante el crucero de investigación  oceanográfica en la embarcación Kai Kai de la Universidad de Concepción, realizado el día 25 de  septiembre del 2008, se realizaron tres estaciones en la Bahía Coliumo en la VII Región en  36º 32` 713`` S y 72º 57` 123`` W la estación 1, la estación 2 36º31`923`` S y 72º 56` 612`` W y la estación 3 36º 30` 808`` S  y 72º 57` 325`` W (ver Fig. Nº 1) en los que se colectaron muestras de aguas a distintas profundidades dependiendo de la estación, la estación 1 muestreo a profundidades de 0 y 3,5 m, la estación 2 a 0, 6 y 12 m y la estación 3 a 0,10 y 20 m, estas muestras fueron recolectadas con botellas Niskin de 7,5 litros y en cada estación también se registraron perfiles de  temperatura, salinidad y oxígeno disuelto en la columna de agua, con un CTD Neil Brown - Mark, simultáneamente se realizo la medición de penetración de luz para determinar la zona fótica  y por ende turbidez con el Disco Secchi.

            Las muestras fueron guardadas y repartidas para cada análisis  a bordo de la embarcación para evitar  la contaminación y la entrada de burbujas en las muestras.

            En la estación de Biología Marina de la Universidad de Concepción se analizaron las muestras determinando clorinidad, oxígeno disuelto, alcalinidad y ph, y nutrientes (fosfato, nitritos y nitratos).

            Los datos obtenidos del CTD fueron analizados con el  software  Ocean Data View para obtener perfiles de los diferentes parámetros estudiados.

Fig. Nº 1-2: A la izquierda se presenta el mapa de Bahía Coliumo, a la derecha la posición geográfica de las estaciones del crucero oceanográfico, realizado entre los 36º 32` 713`` S y 72º 57` 123`` W  y los 36º 30` 808`` S  y 72º 57` 325`` W  (septiembre, 2008)

2.2  Métodos  y Materiales de Análisis en Laboratorio

1.                   Salinidad ( por determinación de cloruros)

Materiales

·                     Solución de AgNO₃  0.56 N estandarizado.

·                     Solución K₂CrO₄ (indicador).

·                     Agua de mar Estándar.

·                     Bureta y Soporte Universal.

·                     Frasco de titulación de 150 ml.

·                     Agitador Magnético.

·                     Capsula Magnética.

Metodología

Se  tomaron las muestras mediante Botella Niskin, de las estaciones (1, 2 y 3), a diferentes profundidades en frascos de polietileno, para posterior análisis en laboratorio, sin adicionar preservantes alguno.

            En laboratorio se aplica el método "Mohr Knudsen" (volumétrico), basado en la titulación de la muestra con solución de Nitrato de Plata y la adición de Cromato de Potasio como indicador.

Se agrega 10 ml del agua de mar estándar  a un vaso de titulación, además de una capsula magnética  dentro del vaso de titulación y este  sobre un agitador magnético. Se agrega unas gotas de K₂CrO₄ (indicador), lo que causara que la solución se torne amarilla.  Luego se llena la bureta con 20 mL de solución de AgNO₃. Se  titula la muestra con  AgNO₃ agregando de 0.1mL hasta notar el primer cambio de color a rojo intenso, disminuir el flujo (agregar gotas de AgNO₃)  luego se registra  el volumen al punto final de titulación (VAg)_std.

Finalmente se repite el mismo procedimiento, considerando el mismo volumen de titulación para la muestra problema. Se obtiene el volumen de AgNO3 gastado para titular la muestra problema (VAg)_m.

pH y Alcalinidad

Para determinar el PH y la alcalinidad de las muestras de agua de mar, se debió calibrar el PH-metro, donde el instrumento pedía automáticamente los buffer estándar 4, 7 y 10, se debió esperar por una lectura estable del PH.

Para calcular el PH de las muestras se añadió 50 ml de agua de mar en un vaso precipitado y se le introdujo el electrodo hasta que el PH-metro registrara el valor estable, se tomo la temperatura de la muestra y se ingreso al PH-metro registrando los valores.

Para realizar una curva de PH, a la muestra se le añade una barra magnética y se agita con el agitador magnético, se mide el PH introduciendo el electrodo, habiendo suministrado anteriormente 0,25ml de acido clorhídrico y se registra el valor, se realiza esto unas siete veces agregando en cada una 0,25ml de acido clorhídrico y registrando el valor que cada vez será menor, con estos datos se realizara un grafico para cada una de las muestras de agua.

Para determinar la alcalinidad de las muestras se le añadió 100ml de agua de mar a una probeta y se midió el PH inicial con el PH-metro y luego de esto se le agrego a la muestra 25ml de acido clorhídrico 0.01N con una pipeta, y se midió el PH de la muestra  acidificada como el PH fue mayor a 4.0 en la muestra con agua de mar, después de la adición del acido, se agrego otros 0.5ml de HCl 0.01N y se midió nuevamente el PH, esto se realizo lavando el electrodo con agua destilada cada vez que se cambiaba de solución.

Luego de esto, a dos probetas se les agrego 100ml de agua de mar, a una se le adiciono  CO2 gaseoso producido por una mezcla de carbonato de calcio mas acido que formaban la reacción, a la otra probeta con agua de mar se le adiciono 0.5 ml de carbonato de calcio con una micropipeta y se procedió a medir el PH de cada una de estas muestras,

Posteriormente se les determino la alcalinidad, adicionando 25ml de acido clorhídrico a cada una de las muestras y midiendo nuevamente su PH, si este no bajaba de 0.4 se volvía a adicionar 0.5ml mas de HCl a la muestra.

Oxígeno

Las muestras tomadas con las botellas Niskin para determinar oxigeno disuelto fueron preservadas a bordo de la embarcación fijándolas con una pipeta automática  de 1 ml de cloruro de manganeso (reactivo A) quedando la punta de la pipeta  bajo la superficie del agua, y luego añadir 1 ml de solución alcalina de yodo (reactivo B) y agitar. Para el análisis de la determinación química del oxígeno del agua de mar será realizada por el método propuesto por Winkler(1888) y modificado por  Strikland y Parson (1968), con los datos obtenidos por este método junto con los datos de las titulaciones se realiza promedios de los blancos y estándar y se procede a calcular las concentraciones de Oxígeno según el procedimiento propuesto por Carpenter (1965).

Nutrientes

           Silicato

Materiales

·         Espectrofotómetro.

·         Probetas de 50 ml con tapa.

·         Pipetas de 25 ml.

·         Reactivos.

·         Solución de molibdato de amonio 0.16 M.

o       Solución de ácido sulfúrico 3,7 M.

o       Reactivo de molibdato de amonio (solución 1:1 de (NH₄)₆ Mo₇O₂₄ y H₂SO₄).

o       Solución de ácido oxálico 0,7 M.

o       Solución de ácido ascórbico 0,1 M.

o       Blanco de reactivos.

Metodología                                

El análisis de silicatos se realiza después del análisis de gases y de salinidad. Estas muestras deben ser filtradas (filtros de 0,8 μm) y tomadas en triplicado. Las botellas deben estar limpias antes de ocuparlas, esto se logra lavando primero con detergente, luego con HCl al 10% y finalmente enjuagadas tres veces con agua destilada. Cuando se va a tomar la muestra es necesario lavar nuevamente la botella con el agua de la muestra antes de tomar esta.

Una vez la muestra tomada esta es guardada a una temperatura de 18-25°C para su previo análisis en tierra. Se mezclan 25 ml de la muestra con 1 ml de reactivo de molibdato y se agita bien. Se espera entre 5 a 10 min para agregar 1 ml de solución de acido oxálico y seguidamente 1 ml de agente reductor, acido ascórbico y se agita nuevamente. Se esperan cerca de 10 min para que se logre intensidad en cuanto al color y luego de esto se mide en celdas de 1 cm en el espectrofotómetro a una longitud de onda de 810 nm. Claro este ha sido calibrado previamente con blancos y estándares.

El blanco reactivo se determina de la misma forma que con la muestra de agua de mar pero en vez de usar 25 ml de muestra de agua de usan 25 ml de agua destilada. Otra variación que sufre el blanco es que luego de mezclar con reactivo de molibdato se esperan entre 10 a 20 min, no entre 5 a 10 como con la muestra de agua de mar.

Para la formación de estándares se tiene que crear una solución de silicato 5.000 μM, esta se almacena en una botella de polietileno en oscuridad para que la solución sea estable. Los estándares creados son en base a 4 concentraciones distintas para así poder crear una curva de calibrado y poder determinar las concentraciones de silicato en las muestras en relación a la absorbancia. Las concentraciones fueron las siguientes: 0,5; 2; 5; 6 μM.

La formula para determinar la concentración en relación a la absorbancia es la siguiente:

Concentración de silicato (μmol/l) = F x absorbancia corregida

Donde:

Absorbancia corregida = absorbancia de la muestra - absorbancia del blanco.

F = factor de estandarización correspondiente a la pendiente de la curva de calibrado.

           Nitrito

Materiales

·         Espectrofotómetro

·         Matraces de 50 ml

·         Pipetas

·         vortex

·         reactivos:

o       Solución de Sulfanilamida:

o       Solución de dihidrocluroro de N-(1-Naftil)-etilendiamina

Metodología

Al tomar las muestras el procedimiento a seguir es el mismo que en el de los silicatos, pero a diferencia de estos al analizar las muestras estas deben estar a una temperatura entre 15º C y 30º C. luego se miden 25 ml de la muestra en un matraz de 50 ml al cual se le adicionan 0.5 ml de solución de sulfanilamida a cada frasco de muestreo, mezclar y esperar que la reacción ocurra de 2 a 8 minutos aproximadamente. Al concurrir este lapso de tiempo se le adicionan 0.5 ml de dihidrocluroro de N-(1-Naftil)-etilendiamina, se mezcla inmediatamente y esperar que la reacción ocurra pero esta vez 10 minutos. Luego se mide la absorbancia de las muestras en el espectrofotómetro a 543 nm.

El blanco  se determina utilizando agua destilada como muestra, en remplazo del agua de mar, en donde se sigue el mismo procedimiento.Un blanco reactivo correcto no debería exceder los 0.03 nm

Estándar se obtuvo, disuelven 0.345 g de nitrito de sodio anhidro (NaNO2) PA seco en 1000 ml de agua destilada. aqui1 ml es equivalente a 5 μmol N. La solución se guardada en un matraz envuelto en papel aluminio para esta se mantenga en oscuridad, el matraz debe contener 1 ml de cloroformo como preservante para que la solución sea estable por un lapso mayor de tiempo.

Se crea un estándar de trabajo que debe estar diluido en 10.0 ml del estándar primario en 1000 ml con agua destilada (1 ml = 0.05 μmol) y se prepara una curva de calibrado en base a cuatro concentraciones distintas y son las siguientes: 0; 0,5; 1; 2.

           Sulfato

Materiales

·         Botella Petersen-Nansen

·         Viales de centelleo de vidrio.

·         Gravillas.

·         Frascos erlenmeyer de 125 Ml.

·         Espectrofotómetro.

·         Pipetas de 1 - 2 mL.

Metodología

            Antes del análisis  las muestras fueron sacadas de las botellas Petersen- Nansen la cual fue lanzada a diferentes metros en el mar. Luego se extrajeron muestras directamente de las botellas y fueron llevadas al laboratorio para su respectivo análisis.

 Ya en el laboratorio se comenzó con el análisis de las muestras sacando 15 ml de cada muestra en frascos de polietileno.

 Posteriormente se le adiciona 1.5 ml de solución de reactivo mezclado a cada muestra y se agito inmediatamente.

 Luego de 5 minutos y antes de 2 horas, se procedió a medir la absorbancia de la muestra en celdas de 10 cm contra agua destilada a una longitud de onda de 885 nm.

Determinación del blanco El blanco reactivo es determinado usando agua destilada en lugar de muestra y procediendo de igual forma que para el análisis de las muestras.

Un blanco no debe exceder 0.03. Si esto ocurre el molibdato de amonio debe ser reemplazado y debe repetirse la determinación del blanco.

Curva de calibración

 A partir del estándar secundario de PO₄-3 prepare 4 soluciones estándar de NO₂- de 100 ml cada una de concentración 0 μM, 0.5μM, 0.75 μM, 1 μM y 2 μM. Recuerde hacer una blanco reactivo.

 En un matraz erlenmeyer coloque 25 ml de estándar y proceda igual que para las mediciones de las muestras. Trabaje en triplicado. Una vez obtenidos todos los datos realice una curva de calibrado.

 A partir de la curva de calibrado determine la concentración de PO₄-3 existente en cada muestra.

Resultados

En las diferentes estaciones realizadas en la bahía de Dichato, y el posterior análisis, de las muestras tomadas, en laboratorio arrojaron los siguientes resultados.

 Salinidad: Por de determinación de cloruros.

		Titulación AgNO3	Titulación AgNO3	Clorinidad
Estación	Profundidad	Estándar	Muestra	Muestra (g/Kg)	Salinidad (%o)
	(m)	(ml)	(ml)
Estación 1	0	7,7	7,2	18,10	32,69
	3,5	7,7	7,6	19,10	34,51
Estación 2	0	8,6	8,4	18,90	34,15
	6	8,4	8,6	19,81	35,79
	12	8,8	8,7	19,13	34,56
Estación 3	0	8,1	8	19,11	34,53
	10	8,5	8,6	19,58	35,37
	20	8,8	8,6	18,91	34,17

Tabla Nº 1: Valores obtenidos de la salinidad mediante el método de "Mohr Knudsen", para cada una de las estaciones a las diferentes profundidades medidas. Datos obtenidos de muestras extraídas de Botellas Niskin.

La clorinidad se determino por titulación volumétrica de los haluros disueltos en el agua de mar con nitrato de plata (AgNO3), formando precipitados de cloruro de plata AgCl (método de Mohr-Knudsen).  Al obtener las distintas salinidades de las estaciones de la Bahía  de Coliumo, se observa,  (tabla 1)  que la estación 1 presenta la salinidad mas baja superficialmente, esta es la mas cercana al estero, se debe destacar que fue la estación con menor batimetría registrada, la estación 2 aumenta la profundidad  así también las salinidades registradas, la estación 3 es la mas lejana al Estero, cercana a la boca de la bahía, la salinidad superficial aumenta. En el (Grafico 1), se puede apreciar como aumenta las salinidades (no uniformes) desde la estación cercana al Estero y la estación ubicada en la boca de la bahía, la mayor salinidad que registro el crucero fue la estación 2, a 6 (m) de profundidad.

Figura Nº 3: Perfil de Salinidad, del crucero de oceanografía química, obtenidos del Software Ocean Data View. Con datos arrojados por CTD.

1-      pH y Alcalinidad

Gráfico nº 1: En la parte superior grafico de Ph de la estacion 1, y en zona inferior grafico de ph de la estacion 2.  Datos obtenidos de muestras extraidas de Botellas Niskin.

Gráfico nº 2: Grafico de Ph de la estación 3.  Datos obtenidos de muestras extraidas de Botellas Niskin.

 

  

Gráfico nº 3: Gráficos de Alcalinidad.  Datos obtenidos de muestras extraidas de Botellas Niskin.

2-      Oxígeno

 Las concentraciones de oxigeno disuelto obtenidas según el procedimiento de Carpenter (1965) fluctúan entre los 5,5 ml L-1 y 2,5 ml L-1 en las estaciones. Las profundidades intermedias entre los  3,5 y 10 metros las concentraciones se encuentran entre los 5,2 y 5,5 ml L-1. Y las mayores profundidades  registradas en las estaciones 2 y 3  bordean  los 2,5 y 3,5 5 ml L-1. Cabe destacar que la menor concentración de Oxígeno se registró en la estación Nº 3 con 2,5  ml L-1 hacia las afueras de la Bahía. y en la zona mas profunda estudiada,  en  la estación cerca del estuario la concertación de Oxígeno disuelto era de 5,5 ml L-1 (Ver Tabla Nº 1).

Estación	Profundidad (m)	Concentración O2 (ml L-1)
1	0 m	4,237216397
	3,5 m	5,457629682
2	0 m	5,340421256
	6 m	5,252312284
	12 m	3,416064199
3	0 m	5,913184126
	10 m	5,502408303
	20 m	2,506385413

Tabla Nº 2: Concentraciones de Oxígeno disuelto mediante el procedimiento de Carpenter (1965). Datos obtenidos de muestras extraídas de Botellas Niskin.

 

Figura Nº 4: Perfil de oxigeno, del crucero de oceanografía química, obtenidos del Software Ocean Data View. Con datos arrojados por CTD.

3-      Nutrientes

4.1.   Silicatos

		Profundidad (m)
		0	3,5
Replica 1	Absorbancia (nm)	0,283	0,212
	Concentración (µM)	4,457	3,338
Replica 2	Absorbancia (nm)	0,253	0,225
	Concentración (µM)	3,984	3,543
Replica 3	Absorbancia (nm)	0,246	0,253
	Concentración (µM)	3,874	3,984

Tabla N°3: Absorbancia y concentraciones de silicato para la estación N° 1 a la profundidad de 0 y 3,5 m. Datos obtenidos de muestras extraídas de Botellas Niskin.

		Profundidad (m)
		0	6	12
Replica 1	Absorbancia (nm)	0,125	0,082	0,093
	Concentración (µM)	1,968	1,291	1,465
Replica 2	Absorbancia (nm)	0,151	0,157	0,11
	Concentración (µM)	2,378	2,472	1,732
Replica 3	Absorbancia (nm)	0,149	0,119	0,111
	Concentración (µM)	2,346	1,874	1,748

Tabla Nº 4: Absorbancia y concentraciones de silicato para la estación N° 2 a la profundidad de 0; 6 y 12 m. Datos obtenidos de muestras extraídas de Botellas Niskin.

		Profundidad (m)
		0	10	20
Replica 1	Absorbancia (nm)	0,188	0,173	0,682
	Concentración (µM)	2,961	2,724	10,740
Replica 2	Absorbancia (nm)	0,18	0,176	0,176
	Concentración (µM)	2,835	2,772	2,772
Replica 3	Absorbancia (nm)	0,181	0,155	0,187
	Concentración (µM)	2,850	2,441	2,945

Tabla Nº5: Absorbancia y concentraciones de silicato para la estación N° 3 a la profundidad de 0; 10 y 20 m. Datos obtenidos de muestras extraídas de Botellas Niskin.

	Estación 1		Estación 2			Estación 3
	0	3,5	0	6	12	0	10	20
Concentración (µM)	4,105	3,622	2,231	1,879	1,648	2,882	2,646	5,485

Tabla N°6: Promedio de concentraciones de silicato para cada estación en relación a la profundidad que se tomo cada muestra. Datos obtenidos de muestras extraídas de Botellas Niskin.

        

Grafico nº 4-5-6: Grafica realizado en base a la tabla N°6 que representa la variación en cuanto a la concentración de silicatos disueltos en la muestra de agua para cada estación en relación a la profundidad de cada muestra. Datos obtenidos de muestras extraídas de Botellas Niskin.

1.2.        Nitritos:

		Profundidad (m)
		0	3,5
Replica 1	Absorbancia (nm)	0.005	0.004
	Concentración (µM)	0.704	0.563
Replica 2	Absorbancia (nm)	0.004	0.006
	Concentración (µM)	0.563	0.845
Replica 3	Absorbancia (nm)	0.003	0.004
	Concentración (µM)	0.422	0.563

Tabla N°7: Absorbancia y concentraciones de nitrito para la estación N° 1 a la profundidad de 0 y 3,5 m. Datos obtenidos de muestras extraídas de Botellas Niskin.

		Profundidad (m)
		0	6	12
Replica 1	Absorbancia (nm)	0.012	0.005	0.006
	Concentración (µM)	1.690	0.704	0.845
Replica 2	Absorbancia (nm)	0.008	0.006	0.006
	Concentración (µM)	1.126	0.845	0.845
Replica 3	Absorbancia (nm)	0.01	0.005	0.005
	Concentración (µM)	1.408	0.704	0.704

Tabla N°8: Absorbancia y concentraciones de nitrito para la estación N° 2 a la profundidad de 0; 6 y 12 m. Datos obtenidos de muestras extraídas de Botellas Niskin.

		Profundidad (m)
		0	10	20
Replica 1	Absorbancia (nm)	0.003	0.003	0.004
	Concentración (µM)	0.422	0.422	0.563
Replica 2	Absorbancia (nm)	0.003	0.004	0.004
	Concentración (µM)	0.422	0.563	0.563
Replica 3	Absorbancia (nm)	0.004	0.004	0.004
	Concentración (µM)	0.563	0.563	0.563

Tabla N°9: Absorbancia y concentraciones de nitrito para la estación N° 3 a la profundidad de 0; 10 y 20 m. Datos obtenidos de muestras extraídas de Botellas Niskin.

	Estación 1		Estación 2			Estación 3
	0	3,5	0	6	12	0	10	20
Concentración (µM)	0.563	0.657	1.408	0.751	0.563	0.469	0.516	0.563

Tabla N°10: Promedio de concentraciones de nitrito para cada estación en relación a la profundidad que se tomo cada muestra. Datos obtenidos de muestras extraídas de Botellas Niskin.

      

Grafico nº 7-8-9: Grafica realizado en base a la tabla N°10 que representa la variación en cuanto a la concentración de nitritos disueltos en la muestra de agua para cada estación en relación a la profundidad de cada muestra. Datos obtenidos de muestras extraídas de Botellas Niskin.

1.3.        Fosfatos

Los datos obtenidos, después de realizar la curva de calibración fueron

Profundidad	Absorbancia (nm)	Concentración de Fosfatos (µm)
	Replica 1	Replica 1
0 m	0,037	1,474103586
3,5 m	0,036	1,434262948
	Replica 2	Replica 2
0 m	0,039	1,553784861
3,5 m	0,04	1,593625498
	Replica 3	Replica 3
0 m	0,04	1,593625498
3,5 m	0,04	1,593625498

Tabla nº 11: Resultados obtenidos a partir de las mediciones de fosfatos en la estación Nº 1. Datos obtenidos de muestras extraídas de Botellas Niskin.

Grafico nº 10: Grafico de Concentración de Fosfatos en la estación nº 1. Datos obtenidos de muestras extraídas de Botellas Niskin.

Profundidad	Absorbancia (nm)	Concentración de Fosfatos (µm)
	Replica 1	Replica 1
0 m	0,033	1,314741036
6 m	0,037	1,474103586
12 m	0,045	1,792828685
	Replica 2	Replica 2
0 m	0,033	1,314741036
6 m	0,038	1,513944223
12 m	0,037	1,474103586
	Replica 3	Replica 3
0 m	-	-
6 m	0,042	1,673306773
12 m	0,043	1,71314741

Tabla nº 12: Tabla de Resultados obtenidos a partir de las mediciones de fosfatos en la estación Nº 2. Datos obtenidos de muestras extraídas de Botellas Niskin.

Grafico nº 11: Grafico de Concentración de Fosfatos en la estación nº 2. Datos obtenidos de muestras extraídas de Botellas Niskin.

Profundidad	Absorbancia (nm)	Concentración de Fosfatos (µm)
	Replica 1	Replica 1
0 m	0,032	1,274900398
10 m	0,034	1,354581673
20 m	0,043	1,71314741
	Replica 2	Replica 2
0 m	0,031	1,235059761
10 m	0,034	1,354581673
20 m	0,052	2,071713147
	Replica 3	Replica 3
0 m	0,029	1,155378486
10 m	0,035	1,394422311
20 m	0,052	2,071713147

Tabla nº13: Tabla de Resultados obtenidos a partir de las mediciones de fosfatos en la estación Nº 3. Datos obtenidos de muestras extraídas de Botellas Niskin.

Grafico nº 12: Grafico de Concentración de Fosfatos en la estación nº 3. Datos obtenidos de muestras extraídas de Botellas Niskin.

Figura Nº 5: Perfil de Temperatura, del crucero de oceanografía química, obtenidos del Software Ocean Data View. Con datos arrojados por CTD.

Discusión y Conclusión

            La Bahía Coliumo al ser una bahía cerrada tiene características bastantes peculiares ya que la tasa de remoción es muy  lenta, así esta características está reflejada en las concentraciones de  elementos inorgánicos disueltos que son considerados  limitantes de la producción primaria y otros no. (Werlinger, 2004). Así en la estación N°1 se observo la concentración más alta de silicatos en la capa superficial en comparación con las otras dos estaciones. Esto puede deberse a que es el punto de muestreo que está más cerca del estuario lo que significaría un aporte directo de silicatos debido a la meteorización que se está produciendo rio arriba por causa de los vientos, humedad, etc.

            Si se compara las otras dos estaciones de muestreo que están más interiorizados hacia el océano, desde la capa superficial hasta los ~10 m se observa una disminución en cuanto a la concentración en un rango de ~0,2 hasta 0,6 μM. La estación tres al tener el punto de muestreo más profundo (20 m) en comparación a las dos anteriores muestra un aumento de la concentración de forma "drástica" para tan poca profundidad fluctuando de 2,6 μM (10 m) hasta 5,5 μM (20 m).

            La alcalinidad y el pH de la zona, estaban dentro de lo esperado, en  un rango de 7.5 y 8.4, lo que da un balance de cargas, con una leve tendencia a ser alcalino, aunque a la máxima profundidad el pH se torna un poco más ácido que cerca de la superficie, esto podría ser por una mayor producción de CaCO_{3 ,} que es reducido a HCO₃-. Por el exceso de este mismo.   

Las concentraciones de Oxígeno en la Bahía Coliumo  varían de forma vertical encontrándose las mayores concentraciones en los 10 primeros metros y luego comienza a decaer levemente, los valores en de los 10 primeros metros de las estaciones se explican ya que la capa superficial por encontrarse en contacto con la atmósfera se encuentra en un equilibrio con esta, teniendo los valores máximos de Oxígeno.   Según  Tresierra  (1982) la cantidad de oxigeno disuelto superficial en el agua de  mar oscila entre los 1,0  ml L-1 y 8,5   ml L-1, si bien esa cantidad máxima puede ser sobrepasada en ocasiones, llevando a un estado de sobresaturación  en zona de muy baja temperatura o en zonas en la que haya una intensa actividad fotosintética, además indica que verticalmente el contenido máximo de oxigeno se encuentra en las capas superficiales y ello tiende a decrecer conforme aumenta la profundidad.

A esto se suma Ichive (1954) que mostró que la distribución del Oxigeno en las capas superiores están influenciadas por las condiciones meteorológicas, efectos biológicos y las condiciones físicas o químicas, y las capas intermedias están gobernadas por el movimiento de las aguas. Estos factores explican las concentraciones de Oxígeno en la Bahía de Coliumo, sin embargo Chile presenta la corriente de Humboldt que una de sus características es la presencia de una extensiva masa de agua ecuatorial subsuperficial de bajo contenido de Oxígeno (<1 ml O₂ l-1).

En este sentido, los bajos niveles de Oxigeno varían estacionalmente (Ahumada & Chuecas 1979), siendo bajos en primavera y desapareciendo a comienzos del otoño (Ahumada et al 1983). Lo que explica las bajas concentraciones obtenidas en la estación 3 a mayores profundidades. Según Arcos et al. (1987), el efecto de estos eventos puede alcanzar áreas muy cercanas a la costa (ca. 4 km), pudiendo ser detectadas incluso dentro de bahías de la zona, como Bahía Concepción y Bahía Coliumo. Aunque, dado lo puntual del muestreo, no podemos corroborar efectos estaciónales.

            Con respecto a la salinidad de la bahía de Coliumo, al evaluar los resultados, se observó que la estación cercana al estuario es decir, directamente influenciada por este, presenta una salinidad media fluctuante en los 33psu  comparada con la estación 3  que presenta una salinidad mayor, lo que indicaría que el estuario estaría aportando cloruros pero en una menor tasa. Al apreciar las dos estaciones más lejanas al estuario la salinidad aumenta por lo que estaría indicando que existen otras entradas de sales a la bahía, mas procesos de evaporación de aguas superficiales que desencadenan un aumento en la salinidad.

Las Concentraciones de Fosfato no variaron mucho de estación en estación, las concentraciones estuvieron en un rango entre 1 y 2 μm que fue el máximo de fosfato encontrado en la estación Nº 3 a una profundidad de 20 metros. Esto es causa de  que  las bacterias usan el fosfato para desintegración de la materia orgánica y principalmente lo hacen a altas profundidades. Además las mayores cantidades de fosfatos en el océano se encuentran en aguas profundas. Es por esto que en las mediciones realizadas la mayor concentración se encontró a los 20 metros en la estación 3.

En la estación N°1 se observo la concentración más alta de silicatos en la capa superficial en comparación con las otras dos estaciones. Esto puede deberse a que es el punto de muestreo que esta más cerca del estuario lo que significaría un aporte directo de silicatos debido a la meteorización que se esta produciendo rio arriba por causa de los vientos, humedad, etc.

Si se compara las otras dos estaciones de muestreo que están mas interiorizados hacia el océano, desde la capa superficial hasta los ~10 m se observa una disminución en cuanto a la concentración en un rango de ~0,2 hasta 0,6 μM. La estación tres al tener el punto de muestreo más profundo (20 m) en comparación a las dos anteriores muestra un aumento de la concentración de forma "drástica" para tan poca profundidad fluctuando de 2,6 μM (10 m) hasta 5,5 μM (20 m).

La razón de porque las otras concentraciones estuvieron mas o menos constantes es porque en estos meses de primavera- verano  las cantidades de fosfatos aumentan en la superficie por efecto de las surgencias marinas. Y van aumentando la concentración de acuerdo va aumentando la profundidad, como podemos ver en las tablas anteriores (TRIBUNA ANTIIMPERIALISTA, 2008)

El nitrógeno en el  ambiente marino encontrado como  sales disueltas como nitrato y nitrito son utilizados por el fitoplancton, este es liberado en forma soluble  durante la remineralización, o transportado como partículas fuera de la capa fótica. Los resultados obtenidos nos muestran que en la primera estación existe un aumento de la concentración de nitrito a mayor profundidad, por el contrario en la segunda estación las aguas superficiales triplican la concentración de la medición más profunda y duplica la profundidad media denotando una baja en las concentraciones a mayor profundidad, y en la tercera estación  las concentraciones van creciendo a medida que aumenta la profundidad pero con valores muy cercanos indicando una homogeneidad en la concentración de nitrito, esto se debe a que las mayores fuentes de nitrógeno al océano son el aporte atmosférico y terrígeno. (Werlinger, 2004) Por esta razón las concentraciones más altas de nitritos se obtienen en las capas profundas y superficiales.

Al finalizar esta investigación podemos decir que los resultados obtenidos, arrojan que en la bahía de Coliumo presenta una influencia por el estero Litril.

Bibliografía

Ahumada, R. & L. Chuecas.1979. Algunas características hidrográficas de la bahía de Concepción (36º40`S; 73º02`W) y áreas adyacentes, Chile. Gayana Miscelánea 8: 1-56.

Ahumada, R., A. & V. Martínez. 1983. Circulation and fertility of waters in Concepción bay. Estuarine Coastal and Shelf Science. 16: 95-105.

Arcos, D., S. Núñez, L. Castro & N. Navarro. 1987. Variabilidad vertical de clorofila a en un área de surgencia frente a Chile central. Invest. Pesq., Chile, 34: 47-55.

Tresierra, A. 1982                                 http://tarwi.lamolina.edu.pe/licochea/propiedad2.html

TRIBUNANATIMPERALISTA, 2008. http://www.tribunaantimperialista.cu/libros/Libros_1/ciencia2/35/htm/SEC_9.HTM

Werlinger. C. (ed). 2004. Biología Marina y Oceanografía: Conceptos y procesos. Consejo Nacional del libro y la lectura - Universidad de concepción. Trama impresores S. A., Chile. 700pp.

WINDOWS.UCAR.EDU, 2008 http://www.windows.ucar.edu/tour/link=/earth/Water/salinity_depth.sp.html& edu=high

 

 

 

Autores:

Camila Soto

Cristina Stuardo

cristyec_19[arroba]hotmail.com

Valentina Valdés

Natacha Torres

 

 

 

Universidad de Concepción

Facultad de Ciencias Naturales y Oceanográficas

Departamento de Oceanografía

Concepción 15 de octubre del 2008

Chile