Determinación de fluidos biológicos: Sangre y semen (página 2)

Partes: 1, 2

NEUTROFILO: La principal función de
los neutrófilos es la de detener o retardar la acción
de agentes infecciosos o materiales
extraños. Su propiedad
más importante es la fagocitosis y son capaces de ingerir
bacterias y
pequeñas partículas. Cuando se trata de combatir
infecciones bacterianas severas, pueden aumentar su
número, ya que la médula ósea los libera en
virtud de la emergencia, antes de terminar su
maduración.

EOSINÓFILOS: tienen una igual actividad motriz que los
neutrófilos y aunque poseen propiedades
fagocíticas, participan menos en la ingestión y
muerte de las
bacterias. Un aumento en su número frecuentemente
acompaña a reacciones alérgicas o procesos
inmunológicos, al igual que presencia de parasitos.

BASÓFILOS : son los que tienen menos movilidad y menor
capacidad fagocítica. Participan en reacciones de
hipersensibilidad (picaduras).

LINFOCITOS: Las funciones del
sistema
linfático son en general la producción de anticuerpos circulantes y la
expresión de la inmunidad celular, refiriéndose
esto último al autorreconocimiento inmune,
hipersensibilidad retardada, rechazo de los injertos y reacciones
injerto contra huésped.

Dos tipos funcionalmente diferentes de linfocitos han sido
descritos: los linfocitos T o timo-dependientes y los linfocitos
B o médula ósea dependientes. Aproximadamente el 70
a 80% de los linfocitos en sangre
periférica muestran características de células T.
Estos tienen una vida media de varios años, así
como una gran capacidad y velocidad para
recircular entre la sangre y los tejidos.
También almacenan y conservan la "memoria
inmunológica" (células T de memoria).
Además, una vez activadas, son las células
efectoras o ejecutoras (células asesinas) de la inmunidad
celular y secretan sustancias biológicamente activas
(linfoquinas) que sirven de respuesta inflamatoria.

MONOCITOS: Los monocitos son los grandes fagocitos
mononucleares de la sangre periférica. Son un sistema de
células fagocíticas producidas en la médula
ósea, que viajan como tales por la sangre, para luego
emigrar a diferentes tejidos como hígado, bazo, pulmones,
ganglios linfáticos, hueso, cavidades serosas, etc., para
convertirse en esos tejidos en macrófagos libres o fijos,
cuyas funciones se corresponden con lo que se conoce como sistema
mononuclear-fagocitario.

LAS PLAQUETAS O TROMBOCITOS:

Monografias.com

Las plaquetas son framentos de citoplasma de
megacariocitos,circulan en la sangre periférica, tienen un
diámetro entre 1 a 4 &µm, su citoplasma se
tiñe azul claro a púrpura y es muy granular. Su
duración en circulación es de 8 a 11 días
Plaqueta, también denominada trombocito, fragmento
citoplasmático de un megacariocito (la célula
de mayor tamaño presente en la médula ósea),
que se encuentra en la sangre periférica, donde interviene
en el proceso de
coagulación de la sangre. Si se produce un daño a
un vaso sanguíneo, las plaquetas circulantes
inmediatamente quedan atrapadas en el sitio de la lesión,
formándose un tapón, primer paso en el control del
daño vascular. Este mecanismo es suplementado por el
sistema de coagulación sanguínea, el cual es el
más importante medio de defensa contra las
hemorragias.

GRUPO ABO

Existen principalmente dos tipos de proteínas
que determinan el tipo de sangre, la proteína A y la
B.

Diferentes combinaciones de las mismas resultan en los 4
grupos
sanguíneos:

Grupo A: Tiene proteína A en la superficie del
góbulo rojo. Reactivo anti – A.

Grupo B: Tiene proteína B en la superficie del
góbulo rojo. Reactivo anti – B.

Grupo AB: Tiene ambas proteínas A y B.

Grupo O: No tiene ninguna (A o B) en la superficie del
góbulo rojo.

El Rh es otra proteína que si está
presente en la superficie del góbulo rojo será Rh
positivo y si está ausente, es rh negativo. Reactivo anti
– D y se confirma con anti – CDE.

ANTICUERPOS

Tipo de anticuerpos

Anti-B

Anti-A

Ninguno

Anti-A y anti-B

COMPATIBILIDAD ENTRE
TRANSFUSIONES

Donante

Receptor

AB1

Sí

Sí: compatibleNo:
incompatible1 Receptor universal2 Donante
universal

Manchas de
sangre

No siempre es posible encontrarla, no porque no exista,
sino porque pudo proyectarse en finísima salpicadura o
haberse intentándola hacerla desaparecer. A veces
más importante que la abundancia es el hallazgo del micro
rastro denunciador.

Después de inspeccionar estos lugares con
luz artificial
y con lupa, hay que realizarlo con luces oblicuas de linternas
que hacen resaltar el brillo de las zonas maculadas.

Diagnostico de la mancha hematica: hay
pruebas de
orientación y pruebas de certeza. Las primeras son de
técnicas sencillas, rápida respuesta
y extrema sensibilidad pero su especificidad es
escasa.

Factores:

• dan reacciones positivas con otras sustancias no
hematinas (jugos de frutas, leche,
etc.).

• Su verdadero valor reside
en el fenómeno inverso, la negatividad, existe entonces
certeza de que no es sangre.

• La técnica consiste en comprimir la zona
sospechosa con un papel de filtro humedecido en agua destilada
y aplicar en la zona de papel con la que se ha hecho contacto,
unas gotas de reactivo; si hay sangre virara el color; al verde
con reactivo de Leucoma laquita, el azul con reactivo de Guayaco,
etc.

Las pruebas de certeza evidencian los caracteres propios
de la sangre excluyendo a toda otra sustancia. Esto se logra
demostrando la evidencia de glóbulos rojos o la de su
materia
colorante la Hemoglobina. Se utilizan métodos
físicos (caracteres ópticos), o
microquímicos (formación de cristales).

Técnicas microscópicas
o Histológicas: muestran en la mancha de sangre,
el elemento especifico: el glóbulo rojo. Se utiliza la
epìmicroscopia; El aparato ilumina la zona a explorar por
reflexión (epi-iluminación), y no por refracción
(trans-iluminación).

Cuando estas técnicas de visualización
directa del glóbulo rojo no pueden aplicarse, se recubre a
preparaciones previas y se estudia el material con la
técnica microscópica clásica, hay
múltiples procedimientos,
el más usual consiste en macerar la mancha en
solución fisiológica, centrifugar el producto y
tratar de visualizar.

Diagnostico individual de la sangre humana y la
animal: el antigeno se obtiene del macerado de la mancha
problema, y el anticuerpo es suero especifico, preparado en el
laboratorio
según la especie animal que se desee investigar
(antihumano, antiovino, antiequino, etc.). Las reacciones
positivas según el método
empleado, se revelan por fenómenos de precipitación
(opalescencia) o de hemólisis (dilución). Son
pruebas de notable valor medico-legal, dada su extrema
sensibilidad.

Diagnostico individual de la huella
sangrienta: demostrada la naturaleza
hematica de la huella y su procedencia humana, el diagnostico
individual por la determinación del grupo
sanguíneo correspondiente es el necesario complemento en
toda investigación criminal.

La base del método es el fenómeno de
isoaglutinación y los factores de importancia medico-legal
con él relacionados, los siguientes:

1 Las aglutininas pueden encontrarse en la sangre
seca;

2 Si el extracto de una mancha de sangre humana aglutina
los glóbulos rojos de un sujeto la mancha no puede
provenir de este.

3 El grupo sanguíneo es fijo, constitucional e
invariable.

4 La determinación grupal en el cadáver es
de idéntico resultado que en el vivo.

Región del cuerpo donde procede la
sangre: El diagnostico grupal es la primera prueba de
orientación que se realiza, después se verifican
microscópicamente, los elementos característicos
que pueden indicar el sitio del cuerpo del cual
procede.

? Sangre nasal (epistaxis): en esta mancha
hematina encontraremos bajo microscopio que
hay, mucus, células epiteliales ciliadas y vibrisas
(pelo nasal).

? Sangre proveniente del aparato
respiratorio (hemoptisis): Pueden observarse
células prismáticas con cilias vibrátiles
provenientes de la traquea y de los bronquios, células
elásticas, cristales de Charcot-Leyden, piocitos y
gérmenes.

? Sangre procedente del aparato digestivo
emitida por la boca: hay restos de alimentos
ingeridos, células epiteliales, características de
la mucosa digestiva, y hematina ácida (producto de la
transformación de la hemoglobina cuando la sangre ha
permanecido en contacto con el jugo gástrico).

? Sangre proveniente del aparato digestivo emitida
por el ano (melena): como en el caso anterior, se encuentra
hematina ácida; materia fecal y entre estos
parásitos intestinales o sus huevos.

? Sangre menstrual. Se observan células
uterinas, (son planas y de núcleo suculento),
células vaginales pavimentosas, ricas en glucogeno,
protozoarios (tricomonas), hongos y
bacterias.

? Sangre no menstrual procedente de violencia
sexual: se caracteriza por la presencia de espermas, pelo
pubiano y células vulgares.

? Sangre proveniente de un parto o su
interrupción: los elementos de diagnostico son los
siguientes: restos placentarios y fetales, corpúsculos de
meconio, pelos de lanudo y unto sebáceo.

Ensayos
preliminares

Los ensayos
preliminares son pruebas rápidas basadas en la actividad
de peroxidasa que posee el grupo hemo de la hemoglobina de la
sangre y que, en presencia de agua oxigenada y de ciertos
reactivos orgánicos, dan lugar a la aparición de
coloraciones o luminiscencia que orientan sobre la posible
existencia de sangre en las muestras analizadas.

La peroxidasa descompone el agua
oxigenada produciéndose agua y oxigeno.

Es este oxigeno el que actúa sobre el reactivo
orgánico reducido, transformándolo en su forma
oxidada, de color característico o
luminiscente.

Se requiere continuar con los ensayos para confirmar su
presencia.

El primero en emplearse fue el reactivo de Van
Deen que consiste en resina de guayaco disuelta en alcohol
etílico. En presencia de sangre y agua oxigenada
desarrolla color azul.

Consiste en bencidina disuelta en ácido
acético glacial o en mezclas de
alcohol etílico y ácido acético. Da color
azul verdoso en presencia de sangre y agua oxigenada.

Recomienda su uso debido a sus propiedades
carcinogénicas.

Otro reactivo utilizado es el de Medenller
leucobase del verde de malaquita disuelta en solución de
ácido acético, se conserva color verde en presencia
de sangre y agua oxigenada.

Mayor confiabilidad en los resultados ofrecen los
reactivos que actúan en medio alcalino, pues disminuye la
posibilidad de falsos positivos.

La alta sensibilidad en medio líquido de la
reacción con fenolftaleina reducida (1 en 1.000.000), se
pone en manifiesto en la localización de sangre en
soluciones muy
diluidas, como son las muestras recogidas en lavabos,
cañerías, etc.

Al agregar gotas del reactivo y de agua oxigenada, se
desarrolla en presencia de vestigios de sangre una
coloración rosada intensa.

La reacción con luminol es sumamente sensible (1
en 5.000.000). Esta prueba de orientación resulta ideal
para aplicar a grandes superficies, como pisos o escaleras que
hayan sido lavados con el objeto de remover la sangre.

Las reacciones preliminares que se han visto pueden dar
falsos positivos, es decir resultados positivos producidos por
sustancias diferentes de la sangre, como las que a
continuación se detallan:

Oxidantes químicos: se pone de
manifiesto esta interferencia, pues sin el agregado de agua
oxigenada ya se observa cambio de
color.

Sales de cobre y
níquel: interfieren solamente en solución
concentrada pero reaccionan en forma diferente a la
sangre.

Otras sustancias (de origen animal): son
aquellas que por contener trazas de sangre dan reacción
positiva. Por ejemplo pus, secreción nasal, etc. La
observación microscópica de estas
sustancias permite su reconocimiento.

Peroxidasas vegetales: son las de mayor
incidencia en la producción de falsos positivos. El color
de la mancha debe observarse antes de los ensayos. Generalmente
su color difiere del de las manchas de sangre ya que el verde y
el blanco son los colores asociados
con el material proveniente de las plantas.

Ensayos
confirmatorios

Son ensayos específicos que certifican la
existencia de sangre en la mancha investigada.

Método microscópico

La observación de glóbulos rojos o blancos
no ofrece problemas en
sangre fresca, pero pueden presentarse en manchas de sangre
seca.

Observación de Leucocitos (G.
Blancos)

La técnica a emplear dependerá de si la
mancha se encuentra sobre un material absorbente: una tela, o un
soporte no absorbente: una hoja metálica.

a) Mancha sobre un soporte absorbente: Se coloca un
pequeño trozo de tela manchada sobre un porta objetos, ser
agregan unas gotas de alcohol etílico absoluto y se deja
en reposo durante 20 min.

A continuación se colorea con solución
Giemsa diluida en 1-10 por espacio durante 30 min. Se enjuaga con
agua destilada y se deja secar al aire libre. Luego
se coloca en un porta objetos y se observa la presencia o no de
glóbulos.

b) Mancha sobre un soporte no absorbente: se deposita
sobre un porta objetos una capa de albúmina de Mayer, se
raspa la mancha y se deja caer el polvo sobre la albúmina.
Se fija el preparado con solución de metanol-formol 9:1
por espacio de 3 min. Se lava con agua destilada, se deja secar y
luego se observa en microscopio.

Observación de Eritrocitos (G.
Rojos)

Las manchas de sangre sobre hojas metálicas
pueden ser examinadas directamente al microscopio por el
método denominado epimiocrospia, que se realiza iluminando
con luz incidente.

Se han logrado exámenes sobre hojas de cuchillos
y han permitido localizar glóbulos rojos. Y a su vez
reconocer la especie por sus características
morfológicas.

Se han logrado buenos resultados con este método
cuando la capa de sangre es muy delgada. Cuando la capa de sangre
es muy gruesa la observación es más difícil;
los eritrocitos decantan por su mayor peso específico,
formándose por encima una capa albúmina. Por otra
parte es más difícil su secado y además
corre riesgo de
descomponerse.

Método microstalograficos.

Consiste en preparación y observación de
cristales obtenidos por acción de ciertos reactivos sobre
la hemoglobina de la sangre. Los métodos mas utilizados
son el de Teichmann y el de Takayama.

Teichmann Consiste en la cristalización
característica del cloro hidrato de hematina bajo la forma
de cristales romboédricos de color café,
utilizando acido acético glacial con vestigios de cloruro
de sodio.

Se macera un trozo de material manchado en la menor
cantidad de agua posible. Se calienta luego un porta objetos
durante un min. Sobre la tapa de un baño de agua a
60º C.

Con una micro pipeta se coloca una gota de extracto en
el centro del porta objetos y se evapora hasta sequedad. Se
coloca sobre la mancha un cubre objetos interponiendo entre otros
un pequeño rectangulito de papel filtro con objeto de
dejar una hendija para el paso de una gota del reactivo de
Teichmann.

Una vez agregado el reactivo se apoya el porta objeto
sobre la placa del baño de agua y se deja hasta la
evaporación total del acido acético, nuevamente se
agrega una gota de reactivo, se evapora de nuevo y se repite el
procedimiento
una tercera y cuarta vez y luego se lleva al microscopio. L a
aparición de los cristales indicaran el resultado
positivo.

Tacayama: Esta basado en la obtención de
los cristales de piridina- hemocromógeno como consecuencia
de acción del reactivo sobre la hemoglobina.

El reactivo consiste en una mezcla de piridina,
solución saturada de glucosa y
solución de hidróxido de sodio: los cristales
obtenidos son de color rosado intenso.

Se coloca en el centro de un porta objetos una gota de
extractos de mancha preparado como se indico en la técnica
de Teichmann. Se evapora con calentamiento suave, se agrega una
gota de reactivo de Takayama y sobre un porta objetos se vuelve a
evaporar hasta sequedad. Para luego ser observado en el
microscopio.

Como resultado positivo se vera de color rosado y de
aspecto de red o similar a los
helechos.

Método
cromatografico.

Se basa en la contención del mismo Rf
característico para un extracto de la muestra y de un
testigote sangre, a ambos sembrados sobre papel para uso
cromatografico o sobre placa delgada.

Se disuelven las mancha en solución
fisiológica, se siembra sobre placa delgada diferentes
cantidades del extracto (1,2 o 5 micro gotas), luego se pulveriza
con reactivo leucobase del verde de malaquita y agua
oxigenada.

Luego de unos min. se coloca la placa en la cuba
cromatografica, previamente saturada con el solvente mencionado.
Se desarrolla el hasta que la altura del solvente en la placa
supere los 10 cm.

Se retira la placa de la cuba y se seca en una estufa a
100º C durante 5 min. para evitar la interferencia de
peroxidasas de origen vegetal.

A continuación se rocía con malaquita y
luego de uno o dos min. si no aparece la coloración, con
el agua oxigenada.

Si el resultado fuera positivo aparecerá una
manchita verde mas o menos intensa con Rf de 0.7 a
0.8.

Las
técnicas difieren según el tipo de muestra
analizada

1) Telas blancas con supuestas manchas de
sangre.

Se hacen toques con la solución contenida, sobre
papel de filtro. En cada uno de ellos se agrega primero una gota
de los reactivos que se desean ensayar. Se espera unos segundos,
por si hubiera oxidantes presentes y si no hay reacción se
agrega una gota de agua oxigenada. La aparición del color
característico de los reactivos ensayados, indica la
posible presencia de sangre. En el caso de Kastle Mayer, se
recomienda agregar una gota de etanol antes de la gota del
reactivo.

2) Telas de color con supuestas manchas de
sangre.

Se humedece un trozo de papel de filtro con
solución fisiológica y se oprime fuertemente sobre
la mancha. Se hacen los ensayos preliminares sobre el
papel.

Si todos los resultados anteriores dieron resultado, se
corta una pequeña hebra de hilo de la mancha y se coloca
en el centro del papel de filtro. Se aplica el reactivo Kastle
Meyer sobre la hebra, se espera unos segundos y se agrega una
gota de agua oxigenada. Observar el cambio de color.

3) Aguas de lavado, vertederos,
cañerías, etc.

Si se sospecha que el agua puede estar contaminada con
muy pequeña cantidad de sangre, se colocan 5-10 ml. de la
misma en un tubo de ensayo y se
agrega una gota de reactivo de Kastle Meyer y a unos segundo una
gota de agua oxigenada. Al agitar se notara un color
rosáceo e indicara resultado positivo.

4) Objetos varios.

Se raspan pequeños fragmentos de las distintas
manchas de sangre se le coloca 2-3 de solución
fisiológica. Luego se eligen los reactivos a utilizar. Se
espera unos segundos y si no llegara a tomar color se le agrega
una gota de agua oxigenada.

5) Superficies amplias como pisos o
escaleras.

Se pulveriza la superficie a investigar con la
solución de luminol y carbonato de sodio. Se espera unos
instantes y se rocía con agua oxigenada. La
aparición de luminiscencia azul, nos orientara sobre la
posibilidad de existencia de sangre en la muestra. Esta
reacción debe efectuarse en la oscuridad.

Si los ensayos preliminares resultan positivos, la
mancha en estudio puede ser de sangre. A continuación se
procede a realizar los ensayos de confirmación.

Propiedades
generales del semen

El volumen medio de
semen de una eyaculación es de 3 a 5 mililitros, con
máximo de 15 ml, depende mucho de la abstinencia sexual
previa, del grado de excitación durante la actividad
sexual e incluso de la presencia de una o varias personas
atractivas durante los últimos días.

El cuerpo humano
elimina periódicamente el semen almacenado. Si no se
eyacula durante un tiempo, se
suelen producir poluciones nocturnas.

El color del semen es normalmente blancuzco o blanco
lechoso. Si el líquido eyaculado presenta un color
anaranjado o rojizo puede que contenga sangre, signo que se
conoce como hematospermia, que puede indicar un trastorno
urológico.

El semen suele tener una consistencia de coágulo,
debido a la facilidad de solidifación que posee gracias al
fosfato de espermina. Es frecuente la aparición de grumos
más sólidos, pero ello no es indicativo de ninguna
clase de
problemas.

El olor y el sabor del semen es peculiar y variable en
cada individuo
dependiendo de múltiples factores. Son
características con un gran componente subjetivo y
emocional. Para unas personas es desagradable y para otras es
excitante. Algunas personas reconocen un sabor como a
lejía, debido a las proteínas alcalinas. El
pH del semen
es de 7,5.

Menos del 10% del volumen del semen de una
eyaculación corresponde a los espermatozoides.

Más del 90% del volumen del semen de una
eyaculación corresponde al líquido
seminal.

La densidad normal
de los espermatozoides en el semen varía de 50 a 150
millones por mililitro, por lo que cada eyaculación
contiene entre 200 y 400 millones de espermatozoides. Para que se
produzca la fecundación del óvulo el semen debe
contener más de 20 millones de espermatozoides por
mililitro. Por debajo de esta cifra se habla de esterilidad o
infertilidad masculina.

El semen contiene algunas otras células,
desprendidas del epitelio de los conductos excretores y de la
uretra.

En caso de infección del organismo, el semen
puede llegar a contener altas concentraciones de virus o
gérmenes como por ejemplo el VIH (que
provoca el sida), por lo
que ante relaciones
sexuales promiscuas el método de protección
más efectivo es el de barrera (condón o
preservativo).

El análisis de los espermatozoides del semen
se llama espermiograma.

Debido a la composición del semen, en condiciones
adecuadas, los espermatozoides pueden permanecer vivos fuera del
organismo durante varios días. También sobreviven
durante cierto tiempo en los conductos excretores después
de la muerte del
varón. Se han llegado a encontrar gametos masculinos vivos
en la trompa de Falopio y en el útero de la mujer varios
días después del coito. Pueden almacenarse en
estado
congelado con nitrógeno líquido durante meses o
años ya que mantienen su capacidad fertilizante tras la
congelación o crió preservación. Debido a
esta última característica es posible la
inseminación artificial y la fecundación in Vitro
con semen congelado o crió preservado. Muchas personas con
cáncer testicular han podido tener descendencia
posteriormente, criopreservando su semen antes del
tratamiento.

Composición del
semen

Menos de 10% del volumen del semen de una
eyaculación corresponde a los espermatozoides, y
más de 90% al líquido seminal. La densidad de
espermatozoides en el semen varía de 50 a 150
millones por mililitro, por lo que cada eyaculación
contiene entre 200 y 300 millones de ellos.

Entre los elementos que componen al semen se encuentran
los líquidos que aporta la vesícula
seminal:

Fructosa, aminoácidos, ácido cítrico,
fósforo, potasio y hormonas.

La próstata aporta de 15 a 30 por ciento del plasma
seminal:

Ácido cítrico, fosfatos ácidos,
calcio, sodio, zinc, potasio,

Enzimas para la separación de las proteínas y
fibrolisina (una enzima que reduce la sangre y las fibras del
tejido).

El último elemento que se agrega al semen es un fluido
que secretan las glándulas uretrales y bulbo uretrales,
una proteína espesa, clara y lubricante conocida como
moco.

Manchas de
Semen

La mancha de semen es el indicio preciso que vincula al
homicidio con el
acceso carnal. El fluido seminal, en la eyaculación
reciente, aparece como un líquido incoloro, adhesivo y de
olor alcalino.

La prueba irrefutable es el hallazgo del espermatozoide
entero; también puede ser captado lavando con suero
fisiológico la cavidad vaginal o rectal.

La supervivencia del espermatozoide en el medio varia,
según la opinión de diversos autores entre 6, 8, 12
y 24 horas. Lo mas frecuente es hallar el esperma desecado, el
aspecto microscópico de la mancha dependerá del
soporte del cual asienta y de la data de la
emisión.

Forma sobre la piel
películas brillantes; en las telas absorbentes, toma el
aspecto bien conocido del mapa geográfico,
coloración blanco-grisácea o amarillenta, y
consistencia acartonada. En los tejidos no absorbentes aparece en
forma de escamas brillantes, semejantes a los rastros que dejan
los caracoles a su paso.

Se aprovecha una propiedad natural del semen, el color
azulado que adquiere la mancha y la fluorescencia
blanco-amarillenta que emite en la oscuridad cuando se lo somete
a la acción de la luz de Wood (ultravioleta). Hay
secreciones tisurales (orina, mucus vaginal esputos), capaces de
producir fenómenos semejantes, pero también muchos
otros elementos y no necesariamente orgánicos, que carecen
de fluorescencia.

Diagnostico genérico de la mancha
espermática

Hay pruebas de orientación, presunción y
de certeza.

1) Pruebas de orientación. El extracto de
la mancha unido a determinados reactivos, produce la
formación de microcristales, originados por la colina y la
espermita, que son productos de
descomposición del esperma. Estos derivados faltan en el
esperma fresco y en el muy antiguo.

Con otras sustancias orgánicas (pus, bilis,
etc.), e inorgánicos (extractos vegetales diversos) se
obtienen resultados similares.

Estas pruebas no son específicas, y solo se
utilizan como complemento de otras de mayor fidelidad.

I) Reacción de Florence:
utiliza solución yodo-yodurada y obtiene cristales de
colina (rombos color castaños).
II) Reacción de Puranen:
utiliza acido flavianico, obtiene cristales de espermina (en
cruz de San Andrés).
III) Reacción de Guarino:
utiliza trinitro-resorcina, obtiene cristales de espermina
(en esqueleto de ramas de pino, de color
amarillo-verdoso).
2) Pruebas de presunción.
Están representadas por el test de la fosfatas acida;
sus basamentos son los siguientes:
I) en el tejido prostático hay
cantidades elevadísimas de fosfatosa
ácida.
II) la cantidad de fenol liberada por un
compuesto de disodio-fenil-fosfato, hidrolizado por la
fosfatosa contenida en la mancha, es medida fehaciente de
ella.
3) Pruebas de certeza. El objetivo es
hallar un espermatozoide completo; la observación de
cabezas o colas aisladas no tiene significado diagnostico de
valor medico-legal, porque existen elementos contaminantes,
como fibras, hongos, esporos, glóbulos rojos, etc. que
se asemejan unas a otras.