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Trichomonas tenax: protozoario flagelado de la cavidad bucal. Consideraciones generales (página 2)




Enviado por Marianella Perrone



Partes: 1, 2

3.
Taxonomía

Honigberg y Lee5 han referido la necesidad de
subdividir al Género
Trichomonas. Sin embargo, los trichomonas bucales del
hombre (T.
tenax
) son morfológicamente casi idénticos a
T. vaginalis, por lo que cualquier clasificación
que se proponga en un futuro de los miembros de la Familia
Trichomonadidae, deberá incluir al protozoario
flagelado de la cavidad bucal dentro del Género
Trichomonas.

T. tenax se encuentra ubicado
taxonómicamente de la siguiente forma:

  • Phylum: Protozoa
  • Subphylum:
    Sarcomastigophora
  • Superclase: Mastigophora
  • Clase: Zoomastigophorea
  • Familia: Trichomonadidae
  • Género: Trichomonas
  • Especies: En el hombre se
    encuentran principalmente cuatro especies: T. tenax,
    T. vaginalis, T. hominis y Pentatrichomonas
    hominis
    2 Como cualquier protozoario, pertenece
    al Reino Protista. Debido a que posee una organización celular eucariótica,
    es Protista Superior6,7.

4.
Morfología

Las características morfológicas de T.
tenax
han sido descritas, empleando para ello el microscopio
óptico de luz y del
microscopio de contraste de fases2,3,4,5,8,9,10,
así como mediante el empleo del
microscopio electrónico de barrido (FIGURA 1) y de
transmisión (FIGURA
2)6,11,12,13,14,15,16,17,18,19.

Las observaciones realizadas destacan que el cuerpo del
microorganismo
presenta una forma muy variable, pero generalmente tiende a ser
ovoide o elipsoidal. Tomando como referencia el promedio de las
mediciones realizadas en 100 células
para así poder
determinar el tamaño del protozoario, la longitud en
término medio es de 7,1 ± 0,06 micrómetros
(aunque la misma puede oscilar entre 4 y 13 micrómetros) y
la anchura media es de 4,7 ± 0,05 micrómetros
(pudiendo oscilar entre 2 y 9
micrómetros8,9,14.

T. tenax presenta cuatro flagelos anteriores
libres y un flagelo posterior o recurrente que se encuentra
pegado a una membrana ondulante y a la cual envuelve por los
lados. Estos flagelos se originan del complejo cineostomal
formado a su vez por igual número de cuerpos basales o de
blefaroplastos que de flagelos. Los flagelos tienen
aproximadamente la misma longitud y a menudo pueden estar
diferenciados en dos grupos, cada uno
de ellos con dos organelos. La longitud promedio de los flagelos
anteriores (tomando como referencia las mediciones realizadas en
93 microorganismos) es de 11,1 ± 0,39 micrómetros y
puede oscilar entre 7 y 15 micrómetros2,5,8,9.
Ultraestructuralmente, están constituidos por una serie de
microtúbulos que miden aproximadamente 120
nanómetros cada uno. El blefaroplasto de donde se origina
el flagelo recurrente está ubicado de forma tal que
origina un ángulo respecto al complejo cineostomal
anterior y al igual que los otros cuatro blefaroplastos, miden de
280 a 640 nanómetros de diámetro. Algunos de los
flagelos libres (concretamente dos) de la zona anterior,
así como también el flagelo recurrente son
denominados también "laminillas". El segmento terminal del
flagelo recurrente, forma una especie de onda o curva denominada
"loop", la cual es característica de esta
especie11,12,14,19.

La membrana ondulante usualmente contiene pocas ondas (no
más de tres) y junto con el flagelo recurrente, recorre,
en sentido del polo posterior de T. tenax, una longitud
aproximada de las dos terceras partes de la longitud total de
dicho microorganismo, terminando en una extremidad libre. Esta
membrana puede tener un origen común en los mismos cuerpos
basales o blefaroplastos de donde se originan bien sea el flagelo
recurrente o uno de los flagelos libres. La varilla basal
cromática, llamada también costa, tiene forma de
bastón o vara delgada y posee diámetro uniforme, el
cual es igual o ligeramente superior al de los flagelos
anteriores. Esta fibra fusiforme es más corta que el
cuerpo del protozoario y posee a su alrededor algunos
gránulos citoplasmáticos, identificados en un
principio como gránulos cromáticos paracostales y
posteriormente identificados al microscopio electrónico de
transmisión como hidrogenosomas
9,14,19.

El axostilo, que por lo común sobresale por el
extremo posterior del cuerpo del protozoario, es relativamente
grueso y le da rigidez a la célula.
Su recorrido pasa cerca del eje anteroposterior del
microorganismo y posee una longitud promedio que varía
entre 0,5 y 6,5 micrómetros. Al microscopio
electrónico se observan subestructuras de apariencia
tubular que varían en número, siendo estas de 35 a
40 y las cuales tiene un diámetro aproximado de 200
nanómetros9,14.

FIGURA 1: T. tenax en
microscopio electrónico de barrido. Se distinguen los
principales organelos: -FL: Flagelos libres; -Ax: Axostilo; -MO:
Membrana ondulante; -LT: Lámina terminal de la membrana
ondulante (X 26.000). Tomado de Ribaux14.

La membrana citoplasmática de T. tenax va
a servir de estructura
limitante entre el contenido interior del microorganismo y el
medio exterior. Básicamente es de naturaleza
mucopolisacárida y constituye en sí una membrana
trilaminar de 100 nanómetros de
espesor2,6,9.

Presenta además un núcleo de forma
elipsoidal u ovoide con un diámetro aproximado de 3
micrómetros y que posee uno o varios nucleolos y
gránulos de cromatina adosados a la membrana nuclear,
dando una apariencia típica de un núcleo vesicular.
Se encuentra situado cerca del polo o extremo anterior del cuerpo
del microorganismo y se ha determinado que su forma puede variar
contínuamente debido a la plasticidad que presenta su
membrana nuclear, adoptando en ciertas ocasiones la forma de
"herradura de caballo". Cabe destacar además, que en
observaciones realizadas al microscopio electrónico se ha
evidenciado la presencia de microporos en la membrana nuclear,
aún cuando esta no es siempre
visible9,12,14,19.

Dentro del citoplasma pueden apreciarse los ribosomas,
el retículo endoplasmático, el aparato reticular de
Golgi, numerosas vacuolas o fagosomas, lisosomas primarios y
secundarios y diversas inclusiones que se pueden identificar
principalmente como gránulos de almidón. Los
ribosomas están compuestos básicamente por ARN de
cadena sencilla y por proteínas
y se encarga de sintetizar las cadenas polipeptídicas que
van a constituir posteriormente proteínas más
complejas, las cuales utilizará el protozoario como
requerimientos necesarios para sus actividades metabólicas
y para la síntesis
de diversas estructuras.
El retículo endoplasmático rugoso se encuentra
rodeando al núcleo del microorganismo y está
integrado por partículas de
glucógeno6,9,11,12,14,16,19.

El retículo endoplasmático, junto con el
aparato reticular de Golgi, constituyen organelos bien
diferenciados y se ubican en el polo anterior de la célula.
Las vacuolas o fagosomas contienen a menudo numerosas bacterias y
hematíes fagocitados en estados avanzados de lisis (FIGURA
3). Ellas regulan la presión
osmótica del flagelado y se encargan de la
eliminación de los productos de
desecho hacia el exterior. Eventualmente, la membrana de la
vacuolas se fusiona con la membrana citoplasmática del
protozoario para expulsar los productos de desecho de las
bacterias que han sido fagocitadas, principalmente los restos de
la pared celular bacteriana. Los lisosomas juegan un papel muy
importante en el metabolismo de
T. tenax, porque contienen y transportan un número
considerable de enzimas. Estos
son los denominados lisosomas primarios y cuando se fusionan con
los fagosomas que contienen el material a degradar, se forman los
fagolisosomas o lisosomas
secundarios11,12,14,15,16.

Es importante señalar que no se reporta la
presencia de mitocondrias ni de centríolos en el
citoplasma de T. tenax. Las mitocondrias han sido
reemplazadas por gránulos cromáticos, los cuales a
su vez han sido identificados al microscopio electrónico
como hidrogenosomas que miden de 0,5 a 2 micrómetros y
cumplen un papel importante en el metabolismo de esta
especie19.

El citoplasma está formado a menudo por un
delgado ectoplasma externo y un endoplasma interno más
voluminoso, sumamente complejo y granular. Las funciones del
ectoplasma comprenden: movilidad, ya que los flagelos constituyen
en sí filamentos largos que se originan en el mismo,
ingestión de alimentos,
excreción de productos de desecho, respiración y protección. El
endoplasma granular posee funciones de nutrición, de reserva
de alimentos e indirectamente está relacionada con la
reproducción del protozoario, puesto que
contiene al núcleo20.

FIGURA 2: Corte transversal de T.
tenax
, mostrando los principales organelos: -N:
Núcleo; -GC: Gránulos de cromatina; -Ax: Axostilo;
-Go: Aparato de Golgi; -FL: Flagelos libres; -MO: Membrana
ondulante; -FT: Flagelo recurrente; -C: Costa; -Ve:
Vesícula (X 35.000). Tomado de
Ribaux14.

FIGURA 3: Corte longitudinal de
T. tenax, mostrando los gránulos de cromatina (o
hidrogenosomas): (GC). También se nota la presencia de
bacterias fagocitadas por las vacuolas: (B). (X 12.500). Tomado
de Ribaux14.

Se ha evidenciado la presencia de fosfatasa ácida
en diversas estructuras de T. tenax. Esta se encuentra
localizada en las vesículas y en la pared del aparato
reticular de Golgi, a nivel de los lisosomas primarios y
secundarios, en diversos gránulos citoplasmáticos y
en el extremo libre o terminal de la membrana
ondulante13,21.

También han sido observadas mutaciones a partir
de una cepa de T. tenax que fue mantenida en
incubación por dos años. Estas mutaciones
obtenidas, constituyen como tal células gigantes, las
cuales más que formas de resistencia ante
factores adverso, son degeneraciones celulares provocadas
presumiblemente por un bloqueo de la citoquinesis (última
etapa de la mitosis),
dando lugar por lo tanto a la formación de células
dobles y posteriormente células múltiples. Las
células gigantes tienen una forma esferoidal y un
diámetro que varía entre 20 y 100
micrómetros. Se observan además numerosos
gránulos de almidón situados por debajo de la
membrana citoplasmática, de dos a ocho grupos de flagelos
así como varias membranas ondulantes. En las
células normales, el axostilo presenta una protuberancia
característica que en las células gigantes nunca se
observa, sumándosele a ello que pueden estar varios
axostilos presentes. También es posible evidenciar varios
aparatos reticulares de Golgi en el citoplasma, así como
de dos a cinco núcleos. Dichos núcleos tienen la
misma forma y dimensiones que en las células
normales22,23.

Aún cuando se ha reportado en alguna oportunidad
la formación de quistes por parte de ciertas cepas de este
protozoario24, está completamente aclarado que
ello no es así, sino por el contrario, T. tenax se
encuentra solamente en forma vegetativa o de trofozoíto,
en tanto que no se encuentra jamás en fase
quística, ni aún en presencia de condiciones
adversas que puedan alterar su
ecología2,17.

5.
Fisiología

Con respecto a la movilidad de T. tenax,
ésta viene dada por los flagelos y la membrana ondulante.
La movilidad puede ser inducida bien sea dejando secar un poco el
frotis sobre la lámina portaobjeto o disminuyendo la
cantidad de luz al microscopio. También pueden inducirse
los movimientos calentando la lámina portaobjeto a una
temperatura de
40°C, o añadiendo sobre la lámina portaobjeto
conteniendo la muestra una o dos
gotas de agua destilada
Está demostrado que mediante el empleo de uno o más
procedimientos
de los antes mencionados para inducir la movilidad a este
flagelado, trae como resultado que ocurran cambios en la
tensión superficial, así como en el potencial
eléctrico de la membrana citoplasmática, trayendo
como consecuencia que se formen corrientes citoplasmáticas
u otras actividades8. En las células gigantes
en cambio la
movilidad es muy lenta en comparación con la que presentan
muchas de las células normales22.

En referencia a la reproducción, T. tenax
se multiplica principalmente en forma asexual por división
binaria longitudinal, pudiendo evidenciar en ciertas ocasiones
fases sexuales de reproducción por un mecanismo denominado
singamia. La división binaria se inicia con la
división del núcleo, seguida por el aparato
neuromotor y finalmente la separación del citoplasma,
formando dos células hijas2,8.

Se ha podido determinar que T. tenax cambia de
forma con facilidad y presenta una emisión moderada de
pseudópodos protoplasmáticos, los cuales son
responsables de captar diversos nutrientes tales como:
partículas sólidas, bacterias, células
sanguíneas y en ocasiones Entamoeba gingivalis, los
cuales se encuentran en su medio ambiente
y una vez captados, son englobados por las vacuolas y llevados al
citoplasma del protozoario donde posteriormente serán
metabolizados2,5,9,18,24.

Por lo general, T. tenax respira directamente
tomando oxígeno
molecular y liberando dióxido de carbono o
indirectamente al emplear el oxígeno molecular liberado de
sustancias complejas por acción
de diversas enzimas20. No obstante, los hidrogenosomas
del citoplasma intervienen en el metabolismo anaeróbico
del protozoario19.

Hasta el presente, han sido pocos los estudios
publicados acerca de las características
bioquímicas de esta especie. Dichos estudios refieren en
sí diversas reacciones citoquímicas que revelan
entre otras cosas la presencia en el citoplasma de
gránulos de glucógenos contenidos en las vacuolas,
de color morado o
rojo brillante mediante el uso de Acido Peryódico de
Schiff y Hematoxilina combinada con solución de
Carmín de Best. También se han detectado la
presencia de corpúsculos metacromáticos de color
azul oscuro mediante el empleo de Hematoxilina con Carmín
de Best, la presencia de lípidos en
las áreas marginales del axostilo, así como de
gránulos de colesterol los cuales se tiñen de color
gris azulado, utilizando para ello Azul de Anilina.
Además, se ha podido evidenciar mediante reacciones
citoquímicas la gran concentración de ADN que posee
este microorganismo en la membrana
nuclear25.

6.
Estructura antigénica

Las primeras investigaciones
sobre la identificación de antígenos de T. tenax, se realizaron
usando cultivos axénicos de tres cepas de este flagelado
en experimentos de
aglutinación. Los resultados de este experimento revelaron
que dos de las tres cepas antes mencionadas compartían los
mismos antígenos, pero ninguna de las tres
compartía antígenos con T.
vaginalis
26.

Se ha podido demostrar que T. tenax tiene cuatro
tipos de antígenos denominados A, B, C y D, siendo estos
en su mayoría termoestables9.

También se ha podido verificar en otro estudio
inmunológico, la caracterización de los
antígenos de T. tenax, T. vaginalis y T.
hominis
. De acuerdo a este estudio, en los sistemas
homólogos antígeno-anticuerpo se formaron 21 curvas
de precipitación en T. vaginalis y 20 curvas de
precipitación en T. tenax y en T. hominis.
Asimismo, existen evidencias de
que T. tenax tiene dos antígenos específicos
en relación con T. vaginalis y siete
antígenos específicos en relación con T.
hominis
27.

Se ha comprobado mediante el uso de pruebas
específicas de inmunoensayo enzimático para la
detección de antígenos de T. vaginalis, la
carencia de una reactividad cruzada entre los antígenos de
la especie antes mencionada con los antígenos de T.
tenax
y Candida albicans28.

7.
Biología
molecular

Si bien es cierto, los estudios de biología
molecular realizados para la detección de T. tenax
son de data reciente. En este sentido, Kikuta y
colaboradores29 desarrollaron un método
para la detección de este protozoario a partir de muestras
de placa dental mediante la técnica de Reacción en
Cadena de la Polimerasa (RCP), usando un par de primers o
cebadores identificados por sus genes de ARNr 18S. A
través de este método se pudieron detectar
células de T. tenax en placa dental en
concentraciones de hasta 5 células por mezcla de
RCP.

Por otra parte, el gen de la subunidad ribosomal
pequeña de ARN de T. tenax (cepa ATCC30207) fue
amplificado a través de RCP y el producto
resultante de 1,55 kilobases fue clonado dentro del vector
plásmido pUC18. Cuatro clones fueron aislados y
secuenciados. Los ADNs insertados tenían un largo de 1.552
pares de bases y su contenido de pares de bases C+G
(Citosina+Guanina) fue de 48,1%30.

8. Cultivo

Se han recomendado una diversidad de medios de
cultivo para el crecimiento de T. tenax en condiciones
axénicas, empleando para ello diversos antibióticos
como Penicilina, Estreptomicina, Neomicina y Colimicina para
evitar el crecimiento de bacterias8,31, así
como para su crecimiento con otros microorganismos tales como
Leishmania tropica11, E.
gingivalis
24, Pseudomonas sp.32
y Staphylococcus epidermidis33.

El primer intento para poder cultivar a T. tenax
en forma axénica fue realizado por Diamond34,
quien publicó un informe donde
estableció la técnica para el cultivo de este
protozoario bajo las condiciones antes mencionadas. Para ello
empleó un caldo nutritivo compuesto por Triptosa,
Tripticasa y extracto de levadura (T.T.Y.) suplementado con suero
de caballo y embriones de carnero libres de células. El
crecimiento del protozoario pudo evidenciarse a las 72 horas de
haberse incubado los medios en la estufa a una temperatura de
35°C. en condiciones de anaerobiosis, siendo el tiempo
estimado de generación de 8 horas y media.

Posteriormente, se han ideado medios de cultivo libres
de suero, en los cuales puede desarrollarse T. tenax en
condiciones axénicas. La eliminación del suero como
componente de estos medios, se traduce por ende en aumentar la
concentración de glucosa y
añadir otros nutrientes como fosfato, hierro,
extracto de levadura y cantidades mínimas de otros
metales35.

La temperatura óptima de crecimiento de este
microorganismo oscila entre 31°C. y 37°C. y el pH
óptimo en el cual se desarrolla oscila entre 7,0 y
7,52,5,9,11,12,33.

Es importante considerar que cuando T. tenax
realiza sus actividades metabólicas, ocurren alteraciones
del pH del medio donde se desarrolla de 7,0 hasta un pH
ácido que oscila entre 5,2 y 5,3, donde ocurre la fase de
declinación de la población que implica desde luego el
máximo número de muertes. Ello es indicativo de que
los valores de
pH ácidos que
se encuentren por debajo de 5,5 limitan su crecimiento en
condiciones axénicas. No obstante, se puede mantener la
neutralidad de los medios por mayor tiempo si se ajusta el pH de
los cultivos con hidróxido de sodio, prolongando
así la fase exponencial de crecimiento de la
población de los protozoarios36.

Se han realizado diversos intentos para cultivar a T.
tenax
en condiciones de anaerobiosis, empleando para ello
medios de cultivo difásicos, cuya fase sólida
está compuesta por suero de caballo coagulado y la fase
líquida está enriquecida con albúmina de
Ringer mezclada con almidón de arroz, suero de pollo
estéril al 10%, ácido ascórbico, vitaminas C y
K y hemina. Aunque algunas cepas del protozoario pueden crecer en
ausencia de oxígeno molecular, el desarrollo es
más lento que cuando crecen en condiciones de
aerobiosis33,37.

Es preciso hacer referencia al hecho de que se han
intentado implementar técnicas
de criopreservacón de cepas de T. tenax, a pesar de
las dificultades para lograrla. Se han podido conservar cepas de
esta especie por 450 días a una temperatura de -70°C.,
utilizando nitrógeno líquido para la
congelación y glicerol al 10% como crioprotector.
Transcurrido este tiempo, las cepas han reiniciado todas sus
actividades al ser colocados los medios de cultivo a una
temperatura de 37°C9.

Ahora bien, es importante tomar en consideración
que cuando se quiere aislar a este microorganismo, se debe
escoger el o los medios de cultivo cuyos componentes aporten
condiciones de pH, humedad y nutrientes adecuados para que pueda
crecer sin dificultad, añadiéndose claro
está las condiciones adecuadas de temperatura y de
tensiones de oxígeno. Todo lo anteriormente dicho resulta
imprescindible si se quieren establecer condiciones iguales o
similares a las existentes en la cavidad bucal humana y
así mantener intacta la ecología de este
protozoario, ya que si el hábitat
es alterado notoriamente, trae como resultado una
disminución en la tasa de reproducción, así
como una menor capacidad de supervivencia en los medios de
cultivo8.

9.
Ecología

T. tenax tiene una distribución mundial. Además del
hombre, algunas especies de primates no humanos son hospederos
naturales de este flagelado. También se han podido
inocular cepas del protozoario en animales
susceptibles de ser infectados con fines experimentales. Estos
incluyen principalmente monos, perros y
cachorros de gatos9.

Este protozoario vive en el cálculo
dental y forma parte integrante de la microbiota que conforma la
placa dental subgingival alrededor de los dientes que se
encuentran en la cavidad bucal humana. También es posible
encontrarlo en las células de la mucosa necrótica
de los márgenes gingivales de las encías, en los
abscesos purulentos de las amígdalas y puede sobrevivir
durante varias horas en el agua de
beber2,6,9,38,39,40.

El hallazgo de T. tenax en la cavidad bucal
humana es indicio de una higiene bucal
deficiente y por lo tanto, su frecuencia aumenta de manera
significativa en aquellos pacientes que presentan problemas
periodontales, siendo esta de tres a cuatro veces mayor que en
los sujetos periodontalmente
sanos17,18,41,42.

Está claramente demostrado que la existencia de
T. tenax en la cavidad bucal humana está
estrechamente ligada a la presencia de los dientes, ya que
resulta significativo el hecho de que debe haber al menos un
diente en la cavidad bucal para que haya posibilidad de encontrar
al flagelado. Es por ello que en los pacientes edéntulos
totales no hay evidencia alguna de poderlo
identificar18,43, así como tampoco en niños
muy pequeños44.

10.
Patogenicidad

Son numerosos los estudios que revelan que T.
tenax
se ha podido aislar a partir de muestras de
cálculo dental y placa dental subgingival de pacientes con
problemas periodontales (principalmente Gingivitis y
Periodontitis Marginal Crónica), por lo que su incidencia
en este tipo de patologías ha sido claramente
demostrada4,6,17,24,38,40,41,43,44,45,46,47,48.
También se ha podido detectar a este protozoario en
pacientes con Gingivitis Ulcerativa
Aguda49,50.

La actividad proteolítica de T. tenax
viene mediada por la presencia de proteinasas de la cisteina o
cisteinasas las cuales son responsables de hidrolizar distintos
tipos de colágeno (Tipos I, III, IV y V), presentes todos
en los tejidos
peridontales51, así como por la presencia de
endopeptidasas52. Se ha podido detectar además
que la mayoría de las cisteinasas que sintetiza y segrega
este microorganismo y que degradan el colágeno tipo I
soluble en ácido, son probablemente enzimas similares a la
catepsina B53.

Por otra parte, se ha demostrado que T. tenax
posee actividad lítica sobre los glóbulos rojos de
humanos, caballos, conejos y ovejas. Esto se debe a que este
protozoario sintetiza dos tipos distintos de hemolisinas, una de
estas es de naturaleza protéica, termolábil y puede
ser inhibida por varios inhibidores de la cisteinasa, en tanto
que la otra es de naturaleza lipídica, termoestable y su
actividad no se ve afectada por inhibidores ni activadores de
proteinasas54.

Existen evidencias más que suficientes para
implicar a T. tenax en la etiología de diversos
procesos
infecciosos que se suscitan fuera de los límites de
la cavidad bucal. A tal efecto, se han reportado varios casos de
trichonomiasis pulmonar donde se ha evidenciado la presencia de
numerosos trofozoítos del protozoario flagelado en
muestras tomadas de exudados purulentos de la pleura y del esputo
de los pacientes implicados, así como un incremento del
porcentaje de eosinófilos en fluídos
broncoalveolares de pacientes infectados con este
parásito. Ello es indicativo desde luego de que la
presencia de este microorganismo en el tracto respiratorio es
mucho más frecuente de lo que se había estimado en
un principio, encontrándose principalmente en pacientes
con abscesos en el pulmón, cáncer pulmonar o
bronconeumonía55,56,57,58,59,60,61.

También se reportó un caso en el cual se
aislaron varias especies de Trichomonas, entre estas T.
tenax
a partir de muestras tomadas del líquido
cerebroespinal de un paciente, a quien se le había
diagnosticado previamente Meningitis Polimicrobiana62,
así como un caso en el que T tenax, T.
hominis
y una flora bacteriana mixta fueron observados en
muestras de pus provenientes de un absceso subhepático en
un paciente alcohólico, el cual tenía una
úlcera ventricular penetrante perforada. Las bacterias
aisladas en este caso fueron: Streptococcus salivarius,
Streptococcus milleri, estreptococos hemolíticos
del grupo F y
Prevotella melaninogenica63.

De igual forma, se identificó a T tenax en
muestras provenientes de 3 pacientes con Fibrosis Quística
en seno64 y se reportó otro caso de
infección de un nódulo linfático por este
protozoario, conjuntamente con Mycobacterium tuberculosis
en una paciente con anemia y
adenopatía cervical. Histológicamente, se
observó necrosis caseosa y reacción por parte de
los macrófagos en el nódulo
infectado65.

11.
Conclusión

Es importante destacar que aún cuando T.
tenax
puede estar como comensal en la cavidad bucal de
algunos individuos, está claramente demostrado el papel
que juega esta especie como microorganismo patógeno,
implicado en distintos procesos patológicos que suscitan
tanto dentro como fuera de los límites de la boca,
constituyendo ésta un foco de infección. De
allí que el Odontólogo no se limite solamente a
saber en cuales procesos infecciosos puede estar implicado este
protozoario, sino que conozca las distintas
características (morfológicas, fisiológicas,
entre otras) de este agente microbiano.

12.
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Publicación original. Acta
odontol. venez
, jan. 2002, vol.40, no.1, p.47-55. ISSN
0001-6365.
Reproducción autorizada por: Acta Odontológica
Venezolana, fundacta[arroba]actaodontologica.com,

Germán Pardi. Profesor
Asociado. Jefe de Departamento de Ciencias
Básicas II. Facultad de Odontología,
U.C.V.

Marianella Perrone –
Profesor Titular. Jefe del Laboratorio de
Microbiología del Instituto de
Investigaciones Odontológicas "Dr. Raúl Vincentelli
y Coordinadora Adjunta de Investigación. Facultad de
Odontología, U.C.V.

Rosandra Mazzali de Ilja. Bioanalista Jubilada,
Cátedra de Microbiología. Facultad de
Odontología, U.C.V.

Partes: 1, 2
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