Paquete tecnológico para el cultivo de la stevia en Sinaloa, México (página 2)
La rotación de cultivos por tres años
con maíz, sorgo, arroz o trigo, por ejemplo, reduce
las pérdidas. Una regulación cuidadosa de la
humedad del suelo y el arado profundo para enterrar los
residuos afectados también ayuda a reducir esta
enfermedad.
La aplicación al suelo de los hongos
Gliocladium y Trichoderma harzianum y la bacteria
Bacillus subtilis (AgroBacilo o Probacil) es
efectiva para controlar esta enfermedad. Es recomendable
evadir terrenos infestados.
También, el desarrollo de la enfermedad se puede
detener, en parte, mediante la aplicación al suelo, a
través del sistema de riego por goteo, de:
Ingrediente activo | Nombre comercial | Dosis/ha | ||
Bacillus subtilis (SL) | AgroBacilo, BaciFol, Probacil, | 4-6 L | ||
Benomil (1) | Benlate, Blindaje, Funlate | 0.5-1.0 kg | ||
Pentacloronitrobenzeno | PCNB o Quintozeno, Pentaclor 600 | 3.0 kg, 12-15 L | ||
Tiofanato Metílico (SL) | Cercobin M | 0.7-1.0 |
Marchitez por Rhizoctonia sp: Las
plantas afectadas manifiestan marchites y perdida de turgencia de
las hojas. Posteriormente se observa un amarillamiento y
secamiento de la planta. La mayoría de las medidas de
control recomendadas para la marchitez sureña son
efectivas para esta enfermedad.
Nematodo nodulador de raíces. La
enfermedad es causada por el nematodo Meloidogyne sp y el
síntoma más típico es la formación de
nódulos radicales de forma irregular, los cuales
generalmente involucran la sección transversal completa de
las raíces afectadas, que se desarrollan inmediatamente
detrás de la punta de crecimiento. El crecimiento apical
de la raíz se detiene una vez que se empiezan a formar las
agallas, pero frecuentemente se desarrollan ramificaciones a
partir de éstas. La porción afectada finalmente se
descompone. Como consecuencia del daño en las
raíces, las plantas tienden a ser de crecimiento reducido,
follaje amarillento que tiende a marchitarse en ambientes
cálidos. El control del nematodo se puede llevar a cabo
por medios culturales, biológicos, mediante el uso de
residuos de plantas y por medios químicos.
Cultural. Rotación de cultivos. Es poco
efectiva: el nematodo es polífago. Barbechos y rastreos.
Los nematodos mueren por inanición, desecación y
calor. La eliminación y quema de las plantas infectadas
evita el incremento de la incidencia de la enfermedad.
Biológico. Aplicación de
Bacillus subtilis (AgoBacilo), B. chitinosporus, B.
Laterosporus, B. mycoides, Pasteuria penetrans y
Paecilomyces lilacinus antes y durante el desarrollo del
cultivo puede controlar la enfermedad satisfactoriamente. Los
nematodos Mononchus y Seinura se alimentan de
nematodos.
Pasteuria penetrans (Bacillus
penetrans) produce esporas que se adhieren a la
cutícula y penetra en la larva de segundo instar, en el
suelo. Bacillus spp. Degrada los cascarones de los
huevos del nematodo.
Paecilomyces lilacinus parasita hembras y
huevos, y es el parásito fungoso más importante en
el control biológico comercial. Otros hongos reportados
son: Catenaria spp., Harposporium anguillulae,
Nematoctonus spp, Verticillium chlamydosporium,
Nemathopthora agynophila, Penicillium spp.
Arthrobotrys, Dactilaria, Dactylella,
Candellabrela, Fusarium spp., Pythium
spp., Phytophthora spp., Dactylella
oviparasitica, etc.
Residuos de plantas. Los residuos de plantas
crucíferas (repollo, brócoli, etc.) incorporados al
suelo al 1-2% (40 a 80 toneladas por hectárea) y cubiertos
con plástico (acolchados) son efectivos para controlar el
nematodo nodulador de raíces y muchas enfermedades
fungosas del suelo. Si esta operación se lleva a cabo
junto con la solarización se tienen mejores resultados.
Los gases azufrados que emanan de los residuos vegetales son los
responsables del control de los patógenos. Los gases de
repollo incrementan las poblaciones bacterianas del suelo, por
ello es compatible con la aplicación de Bacillus
subtilis y otras bacterias antagonistas. Los extractos de
Tagetes patula y T. erecta bajan las
poblaciones de nematodos. También, el tepesquehuite se
menciona como un extracto efectivo si se aplica a través
del sistema de riego por goteo.
Químico. Los tratamientos al suelo con
fumigantes son efectivos; en campo abierto el iodometano (200
kg/ha), metam-sodio a razón de 300 a 600 litros por
hectárea y el bromuro de metilo 200-493 libras/ha. Para
almácigos se recomienda bromuro de metilo (una libra/m3 de
suelo). El metam-sodio (Vapam, BL1480 o Lucafum) puede aplicarse
en almácigos a razón de 1 L/10m2. Otra medida es
vaporizar el suelo a 80 ºC durante una hora.
Solarización del suelo. La técnica
de solarización del suelo durante cuatro a seis semanas de
mayo a julio ha dado buenos resultados, aún mejores si se
combina con dosis subletales de fumigante o residuos re plantas
crucíferas como repollo, brócoli, etc..
Después de la desinfestación del suelo es
recomendable llenar los vacíos microbianos con
biológicos efectivos como Bacillus subtilis
(AgroBacilo), B. chitinosporus, B. Laterosporus, B. Mycoides,
B. penetrans y Paecilomyces lilacinus.
Las enfermedades fungosas del follaje se reportan las
causadas por, Septoria steviae, Botrytis
cinérea, Alternaria steviae, Oidium sp.,
Albugo sp., y Cercospora steviae.
Mancha foliar o septoriasis, la cual tiene como
agente causal a la Septoria steviae, presenta
pequeñas manchas foliares de color café claro a
café oscuro, de forma irregular con halo amarillento, las
cuales pueden unirse afectando la hoja completa. La enfermedad
afecta severamente las hojas básales, llegando a cuasar
necrosis total del tercio inferior de la planta y es favorecida
por alta humedad (lluvias continuas, rocío y neblina) y
temperaturas elevadas; con suelos mal drenados y aireación
deficiente. Hacer aplicaciones de productos a base de cobre,
azufre elemental,
Ingrediente activo | Nombre comercial | Dosis/ha | |||
Clorotalonil (SL) | Daconil 2787 W75, Clorotalonil 75, Bravo | 1.5-3.0 kg | |||
Bacillus subtilis (SL) | BaciFol, Bio-Logic, Serenade | 4-6 L | |||
Folpet (2) | Folpan 80 PH | 2.5-3.0 kg | |||
Mancozeb (5) | Mancozeb 80 PH, Manzate 200, Flonex MZ | 1.0-4.0 | |||
Oxicloruro de cobre (SL) | Cupravit, Cupertron, Mixcu | 2.0-4.0 kg | |||
Oxicloruro de cobre 39%+ Mancozeb 30% | Cupravit Mix | ||||
Oxido cuproso (SL) | Oxido cuproso | 0.8-1.2 kg | |||
Sulfato tribásico de Cu | Cuperquimm | 2.5-3.0 kg |
Tizón temprano o alternariosis, causada
por el hongo Alternaria steviae, Presenta manchas
más grandes que las provocadas por la Septoria
que empiezan a desarrollarse en la margen de las hojas y llegan a
afectar el tallo y los órganos florales. Cuando entra en
esta última etapa se produce la caída de las hojas,
principalmente de las inferiores. Los factores predisponentes son
la alta humedad (lluvias frecuentes, rocío y neblina) y
temperaturas relativamente cálidas. El control puede
llevarse a cabo mediante aplicaciones de productos de cobre
(caldo bordelés), Bacillus subtilis (AgroBacilo),
azoxystrobin (Amistar 80WG).
Ingrediente activo | Nombre comercial | Dosis/ha | |||
Azoxystrobin (1) | Amistar 50 WG | 300-400 g | |||
Azoxystrobin+Clorotalonil | Quadris Opti | 2-0-2.5 kg | |||
Bacillus subtilis (SL) | BaciFol, Bio-Logic, Serenade, | 4-6 L | |||
Boscalid (SL) | Cabrio, Endura | 0.7-0.8 kg | |||
Captafol (SL) | Captafol, Difolatan, Quifolatan 50 PH | 1.0-3.0 kg | |||
Clorotalonil (SL) | Daconil 2787 W75, Eco 720, Clorotalonil 75, Bravo | 1.5-3.0 kg | |||
Folpet (2) | Folpan 80 PH | 2.5-3.0 kg | |||
Mancozeb (5) | Mancozeb 80 PH, Manzate 200, Flonex MZ, | 1.0-4.0 |
Oidio o cenicilla, originada por el hongo
Oidium sp. Los síntomas se inician con un
crecimiento blanco en la superficie de las hojas y ramas. A
medida que el hongo crece las zonas afectadas se vuelven
amarillas y finalmente se necrosan. Al existir ambiente seco y
cálido se recomienda iniciar un programa de aplicaciones
de Azufre elemental (Pensul, Sultron 725, Kumulus DF,
Flwaz 725 L) Bacillus subtilis (AgroBacilo),
Bacillus pumilus (Sonata Aso) azoxystrobin (Amistar 50
WG), myclobutanil (Rally 40 W) y trifloxystrobin
(Flint).
Roya Blanca, cuyo agente causal es el hongo
Albugo sp, se reporta sobre los 1700 m.s.n.m, se
presenta en forma de pústulas de color blanco amarillento
en el envés de la hoja, afectando fuertemente la calidad
de la hoja. El control llevarse a cabo con caldo bordales, azufre
elemental, mancozeb y clorotalonil.
Cosecha y
poscosecha
Cosecha.
Se pueden realizar 4 a 6 cosechas dentro del año
agrícola, dependiendo del riego, fertilización y
ausencia de malezas. Los días largos y con alta
radiación solar favorecen a una buena cosecha.
La cosecha debe hacerse cuando se presente un
máximo del 5% de botones florales, pues esto afecta la
calidad del producto final, y debe realizarse con tijeras de
podar grandes, porque la cosecha con machete causa un gran
impacto en la planta y, muchas veces, esta se seca. Se hace un
corte parejo de todas las plantas, procurando que queden 2 o 3
pares de hojas. Lo ideal sería mecanizar la cosecha, para
bajar costos, lo cual se puede lograr adaptando cortadoras de
setos motorizadas a las cuales se les pueden adaptar llantas y
manubrios. El corte se efectuará a una altura de 7- 10 cm
del suelo. Se acomodarán en canastas de paja, cajas de
plástico o mantas y luego serán llevadas al
cobertizo de secado.
La cosecha debe realizarse durante las horas de la
mañana para que la planta tenga tiempo de secarse al sol
de la tarde. Las hojas se juntan en montones y se ponen encima de
tela media sombra o lona. Las ramas cortadas no deben dejarse a
la intemperie durante la noche porque el rocío o sereno
oxida la hoja.
El rendimiento puede variar de 6 a 8 toneladas de hoja
seca por hectárea/año. Cuando las plantas son
más jóvenes, los períodos de
floración son más cortos y esto influye en el
número de cortes que se deben de realizar. El lapso de
tiempo entre cada cosecha oscila entre 50 y 60
días.
Secado de hojas.
Hay varias formas de secado:
1. Las ramas y hojas cortadas deben de
colocarse sobre una malla media sombra o plástico sin
encimar, dejar al sol hasta el atardecer y en caso de que el
secado no se complete se debe de recoger y guardar bajo
techo, al día siguiente sacar al sol hasta completar
el secado. Una vez secas las hojas deben separarse de los
tallos mediante una horquilla o con golpes con un palo. La
hoja debe estar crujiente y con un contenido de humedad de
aproximadamente 10%.2. El secado también puede realizarse en
estufas tabacaleras, las que con temperaturas reguladas
aceleraran el tiempo de secado. Mediante el secado con hornos
se consigue la mejor calidad de hoja seca con menor
contaminación y en un corto tiempo, tiene como
desventaja el mayor costo de secado y hay que controlar la
temperatura ya que esta no debe sobrepasar los 60°C.
Luego del secado, las ramas se sacuden separándose las
hojas de los tallos.3. Una forma más práctica e
higiénica es llevar a cabo el secado de las ramas y
hojas en un deshidratador solar. Este deshidratador solar
debe tener un techo de dos aguas, para resistir la lluvia, y
construirse de madera, PVC, metal o policarbonato. En la
parte más baja debe tener como mínimo 2.5 m y
3.0 m en la parte alta. El ancho puede ser de 6.0 a 12 metros
y el largo estará en relación al tamaño
de la plantación que se pretende establecer y a medida
que se incremente el área de cultivo, el deshidratador
puede también irse ampliando. Es necesario construir
un sistema de drenaje alrededor para desaguar el exceso de
lluvia, alrededor del cobertizo que no permita el ingreso de
agua al interior. Las paredes y el techo deberán estar
totalmente forradas con plástico transparente de
invernadero o policarbonato, de tal forma que se pueda
transmitir la luz, la cual se convertirá en calor en
el interior del deshidratador.
Embolsado.
En bolsas de plástico limpias se colocan
alrededor de 8-10 kg de hoja secas, en un lugar seco, sobre
parrillas para evitar el contacto con el suelo. Para envío
se recomienda hacer pacas similares a las de alfalfa, como la que
se ilustra en la siguiente fotografía.
Costos de
producción por hectárea (pesos
mexicanos)
Rubro | Primer año | Segundo |
Renta del terreno | 10,000.00 | 10,000.00 |
Análisis de suelo | 600.00 | 0.00 |
Arado y rastreada | 1,600.00 | 0.00 |
Plántulas de stevia (100,000) | 200,000.00 | 0.00 |
Costo de trasplante | 15,000.00 | 0.00 |
Deshierbe | 6,300.00 | 6,300.00 |
Cosecha 4 veces | 28,000.00 | 28,000.00 |
Secado / embolsado | 3,000.00 | 3,000.00 |
Fertilizante | 10,000.00 | 10,000.00 |
Fungicida (4 aplicaciones) | 1,000.00 | 1,000.00 |
Insecticida (8 aplicaciones) | 640.00 | 640.00 |
Abono orgánico | 10,000.00 | 3,000.00 |
Aplicación de | 4,000.00 | 4,000.00 |
Cabezal riego por goteo | 24,000.00 | 0.00 |
Cinta de goteo | 12,500.00 | 0.00 |
Tubería de PVC 3" | 6,500.00 | 0.00 |
Costo total de producción | 333,140.00 | 65,940.00 |
Bibliografía
consultada
Barksdale, T. H. 1968. Rhizoctonia soil rot and buckeye
rot of tomatoes: Observational differences in susceptibility.
Plant Dis. Rep. 52:284-286.
Casaccia, J. y Álvarez, E. 2006. Recomendaciones
técnicas para una producción sustentable del Ka"a
He"e (Stevia rebaudiana (Bertoni) Bertoni) en el Paraguay. Manual
Técnico No. 8. Ministerio de Agricultura y
Ganadería, Subsecretaría de Estado de Agricultura,
Dirección de Investigación Agrícola.
Instituto Agronómico Nacional, Programa de
Investigación de Ka"a He"e.
Davey, A. E. and Leach, L. D. 1941. Experiments with
fungicides for use against Sclerotium rolfsii in soils.
Hilgardia 13:523-547.
Eddins, A. H. and West, E. 1946. Sclerotium rot of
potato seed pieces. Phytopathology 36:239-240.
Epps, W. M., Patlerson, J. C. and Freeman, L. E. 1951.
Physiology and parasitism of Sclerotium rolfsii.
Phytopathology 41.-245-2S6.
Ficha tecnica de stevia (Stevia rebaudiana)
caá heé – yerba dulce.
www.herbotecnia.com.ar/aut-stevia.html
Galperín de Levy, R.: (1982) Stevia
rebaudiana Bertoni. Extracción, purificación y
empleo del steviósido. Anales de SAIPA, Vol. 4, 45:572,
150 pp.
Gaona, Crisóstomo. Cultivo de la Stevia. Granja
Virginia.
stevia-bolivia.com/documentos/proceso_agricola.pdf.
Haasis, F. A. 1952. Soil fumigation with
chorobromopropene for control of Sclerotium rolfsii in
Dutch Iris. Plant Dis. Rep. 36:475-478.
Johnson, S. P. 1953. Some factors in the control of the
Southern blight organism, Sclerotium rolfsii.
Phytopathology 43:363-368.
Kinghorn, L. y Soejarto, J.: (1991), Stevia rebaudiana,
Sugar alternative. Medical Plant. 32, 164-167.
Leach, L. D. and Davey, A. E. 1938. Determining the
sclerotial population of Sclerotium rolfsii. Jour. Agr.
Res. 56:619-631.
Lynch. J. M. 1987. In vitro identification of
Trichoderma harzianum as a potential antagonist of plant
pathogens. Current Microbiologv, 16: 49-53.
Marcavillaca, M.: (1985), Micropropagación "in
vitro" de (Stevia rebaudiana Bertoni) por medio de
segmentos nodales y meristemas. Anales de SAIPA, Vol. 6, 241:243,
269 pp.
Marcavillaca, C: (1988) Stevia rebaudiana
Bertoni fuente de un importante edulcorante natural. En: IDIA,
449-452, 34:36.
Pamies, Josep. Manual de cultivo, reproducción y uso de
la Stevia rebaudiana.
http://www.dolcarevolucio.cat/es/donde-hay-plantas
Ramírez Jaramillo, Genovevo. 2011. Programa
Estratégico para el desarrollo Rural Sustentable de la
Región Sur – Sureste de México:
Trópico Húmedo. Paquete Tecnológico Stevia
(Stevia rebaudiana), Establecimiento y mantenimiento.
Centro de Investigación Regional Sureste. Campo
Experimental Mocochá. Mocochá,
Yucatán.
Ramírez Villapudua, J. 1996. Manejo Integrado de
la Mosca Blanca de la Hoja Plateada. Universidad Autónoma
de Sinaloa.Culiacán, Sinaloa, México. ISBN:
968-7448-14-8. 79 pp.
Ramírez-Villapudua, J. 1985. Effect of
solarization of soil amended with cabbage residues on
Fusarium oxysporum. f. sp. conglutinans, race
5. Phytopathology 75:1291, abstract 110.
Ramírez-Villapudua, J. 1985. Effect of various
organic amendments and volatiles emanations from decomposing
cabbage on F.o. f. sp. conglutinans races 5.
XII Congreso Nacional de Fitopatología de la Soc. Mex. de
Fitopatología y XXV Anual Meeting of the American
Phytopathological Society, Caribbean División. Guanajuato,
Gto. Resumen 151.
Ramírez-Villapudua, J. 1991. Enfermedades de
Hortalizas. Universidad Autónoma de Sinaloa. 105 pp.
Culiacán, Sinaloa, México.
Ramírez-Villapudua, J. 1991. El acolchado con
plástico y los cultivos hortícolas.
Agronomía en Sinaloa 3: 2-7.
Ramírez-Villapudua, J. 1996. La
Solarización del Suelo, un Método Sencillo para
Controlar Fitopatógenos y Malas Hierbas. Universidad
Autónoma de Sinaloa.Culiacán, Sinaloa,
México. ISBN: 968-7448-16-4.
Ramírez-Villapudua, J. 1996. El Uso de Acolchados
Plásticos en la Horticultura. Universidad Autónoma
de Sinaloa, Culiacán, Sinaloa, México.
Ramírez-Villapudua, J. 2000. Técnicas de
plasticultura para el desarrollo de cultivos hortícolas.
SQM de México. Puerto Vallarta, Jalisco, mayo 18 de
2000.
Ramírez-Villapudua, J. y Montoya-Angulo, S. 1992.
La solarizacion del suelo, una alternativa para controlar
patógenos y malas hierbas. Agronomía 2:12
18.
Ramírez-Villapudua, J. y Munnecke, D.E. 1986.
Solar heating and amendments control cabbage yellows. California
Agriculture 40:11-13.
Ramírez-Villapudua, J. y Munnecke, D.E. 1987.
Control of cabbage yellows (Fusarium oxysporum f.sp.
conglutinans) by solar heating of field soils amended
with dry cabbage residues. Plant Disease 71:217-221.
Ramírez-Villapudua, J. and Munnecke, D. E. 1988.
Effect of solar heating and soil amendments of cruciferous
residues on Fusarium oxysporum f.sp.
conglutinans and other organisms. Phytopathology
78:289-295.
Ramírez-Villapudua, J. y Sáinz
Rodríguez, R.A. 1994. Manejo integrado de enfermedades en
hortalizas. En Curso de Aprobación de Profesionales en el
Manejo Fitosanitario de Hortalizas. Ed. Secretaría de
Agricultura y Recursos Hidráulicos Univ. A. de Sinaloa,
pág. 118-122. Villa Gustavo Díaz Ordaz, Sinaloa,
México. Del 10 al 14 de octubre de 1994.
Ramírez-Villapudua, J. y
Sáinz-Rodríguez, R.A. 2006. Manejo Integrado de las
Enfermedades del Tomate. Once Ríos Editores. Consejo
Estatal de Ciencia y Tecnología, Gobierno del Estado de
Sinaloa, Universidad A. de Sinaloa y Agrobiológica, S.A.
de C.V.
Ramírez-Villapudua, J. y Estrada-Ramírez,
F.J. 1994. Increasing effectiveness of solarization against
pathogens and weeds by mean of two layers of polyethylene. XV
Congreso Latinoamericano de Fitopatología de la Sociedad
Latinoamericana de Fitopatología. Santiago de chile,
Chile. Resumen 055, pág. 33.
Weber, G. F. 1931. Blight of carrots caused by
Sclerotium rolfsii. Phytopathology 21:1129
-1140.
Zubiate R. F. 2007. Manual del Cultivo de La Stevia
(Yerba Dulce). Universidad La Molina. Lima,
Perú.
Autor:
José Ramírez
Villapudua
Roque A. Sáinz
Rodríguez
Página anterior | Volver al principio del trabajo | Página siguiente |