El acondicionamiento previo de la dentina bovina con ácido poliacrílico (página 3)

• 80. Berry EA III, Von Der Lehr WN, Herrin HK. Dentin surface treatments for the removal of the smear layer: an SEM study. J Am Dent Assoc. 1987; 115: 65.

• 81. Pashley DH. Smear layer: Physiological considerations. Oper Dent. 1984; suppl 3: 13.

• 82. Sun Z, Tao C, Li-hong G. Scanning electron microscopy study of cavity preparation in deciduous teeth using the Er:YAG laser with different powers. Lasers Med Sci. 2010.

• 83. Pashley DH, Tao L, Boyd L. Scanning electron microscopy of the substructure of smear layers in human dentine. Arch Oral Biol. 1988; 33: 265.

• 84. Pashley DH. Interctions of dental materials with dentin. Trans Acad Dent Mater. 1990; 3: 55.

• 85. White G, Beech D, Tyas M. Dentin smear layer: an asset or a liability for bonding?. Dent Mater. 1989; 5: 379–83.

• 86. Perdigao J, Ritter A. Adessao aos tecidos dentários. En: Baratieri LN et al Autor. Odontología Restauradora Fundamentos e Possibilidades. Sao Paulo: Santos: 2002. p. 83-128.

• 87. Eick JD, Wilko RA, Anderson CH, Sorenson SE. Scanning electron microscopy of cut tooth surfaces and identification of debris by use of the electron microprobe. J Dent Res. 1970; 49: 1359.

• 88. Pashley DH. Smear layer: an overview of structure and function. Proc Finn Dent Soc. 1992; 88: 215.

• 89. Pashley DH, Tao L, Boyd L, King G, Horner J. Scanning electron microscopy of the substructure of smear layers in human dentine. Arch Oral Biol. 1988; 33: 265–70

• 90. Prati C. Mechanisms of dentin bonding. Katholieke Universiteit, Leuven, Belgium, 1993, 171–91

• 91. Van Meerbeek B, Inoue S, Perdigao J, Lambrechts P, Vanherte G. Enamel and dentin adhesión. En: Summit JB, Robbins JW, Schwartz RS, Editor. Fundamentals of operative Dentistry A Contemporary Approach. 2ºed. Singapure: Quintessense publishing Co Inc: 2001. p. 178-235

• 92. Miyazaki M, Iwasaki K, Onose H, Moore BK. Resin-modified glass- ionomers: effect of dentin primer application on the development of bond strength. Eur J Oral Sci. 1999; 107: 393-9.

• 93. Mauro SJ, Silva E Souza Jr. MH, Lima Navarro MF. Influence of poliacrylic acid in bond strength of glass-ionomer cement to dentin. Rev Odontol Univ Sao Paulo. 1993; 7: 27-33.

• 94. Mount, GJ. Atlas de cimento de ionômero de vidro. 2º ed. Santos; 1996.

• 95. Mount GJ. Adhesion of glass-ionomer cement in the clinical environment. Oper Dent 1991 Jul-Aug; 16(4):141-8.

• 96. Mallorquín CM, Medina G, Guadalupe A. Manual práctico del procedimiento de restauración atraumática: Proyecto de cooperación Técnica entre países Paraguay– Uruguay. Montevideo: OPS; 2009.

• 97. Tanumiharja M, Burrow MF, Tyas MJ. Microtensile bond strengths of glass ionomer (polyalkenoate) cements to dentine using four conditioners. J Dent. 2000 Jul; 28(5): 361-6.

• 98. Powis,D.R. et al. Improved adhesion of a glass ionomer cement to dentin and enamel. J Dent Res. 1982.; 6(12): 1416-22.

• 99. Yap AU, Tan AC, Goh AT, Goh DC, Chin KC. Effect of surface treatment and cement maturation on the bond strength of resin modified glass- ionomers to dentin. Oper Dent. 2003; 28: 728-33.

• 100. Abdalla AI. Morphological interface between hybrid ionomers and dentin with and without smear-layer removal. J Oral Rehabil. 2000; 27: 808-14

• 101. Gonzalez S, Perez I, Navajas JM. Bonding of glass ionomer cement to dentina in vitro study. Rev Eur Odontoestomatol. 1991; 3(3): 161-6.

• 102. Prati C, Montanari G, Biagini G, Fava F, Pashley DH. Dent Mater. 1992; 8 (1): 21-6.

• 103. De Munck J, Van Meerbeek B, Yoshida Y, Inoue S, Suzuki K, Lambrechts

P. Four-year water degradation of a resin-modified glass-ionomer adhesive bonded to dentin. Eur J Oral Sci. 2004; 112: 73-6.

• 104. Van Meerbeeck B, Yoshida Y, Lambrechts P, De munck J, Inoue S, Vargas M et al. Correlative morphologic and chemical characterization of tooth-biomaterial interactions. En: Tagami J. Self-etching primer: current status and its evolution. International Symposium 2001, Tokyo. Kuraray Medical 2003; 1: 41-55.

• 105. Van Meerbeeck B, Vargas M, Inoue S, Yoshida Y, Peumans M, Lambrechts P et al. Adhesives and cements to promote preservation dentistry. Oper Dent. 2001; 26: 119-44.

• 106. Inoue S, Van Meerbeeck B, Abe Y, Yoshida Y, Lambrechts P, Vanherle G et al. Effect of remaining dentin thickness and the use of conditioner on micro-tensile bond strength of a glass-ionomer adhesive. Dent Mater. 2001; 17: 445-55.

• 107. Yoshida Y, Van Meerbeck B, Nakayama Y, Snauwaert P et al. Evidence of chemical bonding at biomaterial-hard tissue interfaces. J Dent Res. 2000; 79: 709-14.

• 108. Sundfeld RH, Mauro SJ, Sundfeld MLMM, Briso ALF. Clinic/Microscopic evaluation of adhesion hybrid layer and tags in dentinary tissue – Effects of materials, technic applications and analysis. JBD: J Bras Dent Estet. 2002; 1: 315-31.

• 109. Pereira PN, Yamada T, Tei R, Tagami J. Bond strength and interface micromorphology of an improved resin-modified glass ionomer cement. Am J Dent. 1997; 10 (3): 128-32.

• 110. El-Askary FS, Nassif MS, Fawzy AS. Shear bond strength of glass- ionomer adhesive to dentin: effect of smear layer thickness and different dentin conditioners. J Adhes Dent. 2008; 10(6): 471-9.

• 111. Nakanuma K, Hayakawa T, Tomita T, Yamazaki M. Effect of the application of dentin primers and a dentin bonding agent on the adhesion between the resin-modified glass ionómero cement and dentin. Dent Mater. 1998; 14(4): 281-6.

• 112. Fonseca RB, Haiter-Neto F, Fernandes-Neto AJ, Barbosa GAS, Soares CJ. Radiodensity of enamel and dentin of human, bovine and swine teeth. Arch Oral Biol. 2004; 49(11): 919-22.

• 113. Puentes H, Rincón L. Caracterización química y mecánica parcial de dientes incisivos de bovino como posible modelo de estudio de materiales dentales. Rev. Federación Odontológica Colombiana. 2004; 20: 9-19.

• 114. Posada M; Sánches C; Jaime G; Peláez A; Restrepo L; López J. Dientes de bovino como sustitutos de dientes humanos para su uso en la odontología. Revisión de literatura. Revista CES Odontología. 2006; 19 (1): 63-8.

• 115. Soares C; Fernando F; Briao G; Powers J. Tensile bond strength of four resin luting agents to bovine enamel and dentin. J Prosthet Dent 2003; 89: 558-64.

• 116. Soto CA, Stanke FC, Rioseco MS. Diente bovino. Una alternativa a los diente humanos como sustrato en investigación. Revisión bibliográfica. Rev Fac Odont. Univ de Chile. 2000; 18(1): 19-29.

• 117. Nakamichi I, Iwaku M, Fusayama T. Bovine teeth as possible substitutes in the adhesion test. J Dent Res. 1983; 62(10): 1076-81

• 118. Titley KC, Torneck CD, Smith DC, Applebaum NB. Adhesion of glass ionómero cement to bleashed and unbleached bovine dentin. Endod Dent Trautol. 1989; 5(3): 132-8.

• 119. Mota CS; Demarco FF, Camacho GB, Powers JM. Tensile bond strength of four resin luting agents bonded to bovine enamel and dentin. J Prosthet Dent. 2003; 89(6): 558-64.

• 120. Miyazaki M, Iwasaki K, Onose H. Adhesion of single application bonding systems to bovine enamel and dentin. Oper Dent. 2002; 27(1): 88-94.

• 121. Dyce, Sack, Wensing. Anatomía veterinaria. 2ºed. McGraw Hill interamericana. 1999.

• 122. Sisson S, Grossman J. Anatomía de los animales domésticos. tomo I; 5ºed: Masson; 2000.

• 123. Gazquez A, Blanco A. tratado de histología veterinaria. Masson. 2004.

• 124. Schilke R, Lisson J, Bauss O, Geurtsen W. Comparison of the number and diameter of dentinal tubules in human and bovine dentine by scanning electron microscopic investigation. Arch Oral Biol. 2000; 45(5): 355-61.

• 125. ISO/TS 11405: 2003 Second edition 2-16p (H) TC 106/SC1 Dental Materials-Testing of adhesion to tooth structure. Disponible en INDECOPI-PERÚ.

• 126. Corniati FA, Rodrigues JR, Torres CRG. Influence adhesive system type on bond strength to deproteinized dentin. Rev Odontol da UNESP. 2006; 35(3): 113-8

• 127. Carvalho JC. Influence of the configuration and bevel in bovine enamel, in class V cavities for packable composite resin restorations: microleakage study. São José dos Campos, 2001, 167f. Tesis (Doctorado en Odontología, Área de Odontología Restauradora) – Facultad de Odontología de São José dos Campos, Universidad Estadual Paulista. São José dos Campos.

• 128. M. Coral, M. Cubies, E. Padullés, L. Giner, M. Cortada. A propósito del termociclado. Breve exposición de los principios físicosen los que se basa. DENTUM 2002; 2(1):30-5

Anexos

FIG.1 A) Fase de capuchón del desarrollo dental. El ectomesénquima condensado en el interior de la invaginación corresponde a la papila dental (PD). El folículo dental (FD) empieza a desarrollarse alrededor del germen dental. B) Fase de campana precoz. Se distinguen la capa de odontoblastos(OD) y algunos vasos sanguíneos (VS) en la

pulpa dental (Ten Cate, 1994).

FIG.2 Representación esquemática del proceso odontoblástico a nivel de dentina; y las células odontoblásticas a nivel de la pulpa (Abramovich, 1999).

INORGÁNICA AGUA ORGÁNICA

FIG. 3 Torta estadística que muestra la distribución
porcentual de los elementos la dentina (Steenbecker, 2006).

FIG. 4 Esquema representativo de las características estructurales de la dentina (Izquierda).

Trayectoria de los túbulos dentinarios en S desde el esmalte o cemento hasta la pulpa (Steenbecker, 2006; Abramovich, 1999).

FIG. 5 Cantidad de túbulos dentinarios a nivel superficial, media y profunda de la dentina (adaptado de Garberoglio y Brännström,1976).

FIG. 6 Microfotografías de dentina A) Corte Longitudinal donde se observa túbulos dentinarios (T), dentina intertubular(DI). B) Corte transversal que muestra

túbulos dentinarios (T), y dentina peritubular (DP) (Perdigao, 2002).

FIG. 7 A) Microfotografía de la dentina intertubular presentando las fibrillas colágenas.

B) Organización estructural del colágeno (Perdigao, 2002; Ten Cate, 1994).

FIG. 8 a) Partículas de vidrio fundido a alta temperatura, b) Después del enfriado bruscamente se obtiene un vidrio blanco lechoso, c) Polvo de partículas finas luego de triturarla (Albers, 2002).

FIG. 9 Microscopía mostrando las tres partículas del cemento de ionómero de vidrio (Adaptado de Albers, 2002).

FIG. 10 Las tres fases de reacción de fraguado del cemento de ionómero de vidrio convencional (Albers, 2002).

FIG. 11 Representación esquemática de la reacción de fraguado del cemento de ionómero de vidrio modificado por resina (Albers, 2002).

FIG. 12 Fotomicrografia A) Vista de los túbulos dentinarios (anillo blanco); Presencia de bacterias (cuadrado blanco). B) MEB en gran ampliación (30 000X) mostrando bacterias insinuadas entre las fibras colágenas de la dentina intertubular.

Esta bacteria mide cerca de 1,5 um (Perdigao, 2002).

FIG. 13 Microfotografía realizada con microscopio electrónico de barrido con campo de emisión, sección lateral de la dentina. Una capa de barrillo dentinario aproximadamente de 1mm cubre la superficie de la dentina,

y un smear plugs extendiéndose varios micrómetros ocluyendo el túbulo dentinario (Perdigao, 1995).

FIG. 14 Fotomicroscopia del MEB de la superficie dentinaria, acondicionada con ácido poliacrílico al 20%. Mostrando remoción del smear layer pero no abre

los túbulos dentinarios completamente (Inoue et al 2001).

FIG. 15 Comparación de los diámetros de los túbulos dentinario en los según su localización dientes de bovino y de humano (Gazquez, 2004).

FIG. 16 Comparación de la cantidad de los túbulos dentinarios según su localización en los dientes de bovino y de humano (Fonseca y Haiter-Neto, 2004)

FORMULARIO DE RECOLECCIÓN DE DATOS

PRUEBA DE CIZALLAMIENTO SIN ACONDICIONAMIENTO

(Para determinar la fuerza adhesiva del grupo control)

FORMULRIO DE RECOLECCIÓN DE DATOS

PRUEBA DE CIZALLAMIENTO CON ACONDICIONAMIENTO

(Para determinar la fuerza adhesiva del grupo experimental)

PRUEBA DE NORMALIDAD

Para determinar que tratamiento estadístico se utilizará, se paso por realizar la prueba de normalidad, para saber si los datos siguen o no, una distribución normal.

Tabla 1.

Prueba de normalidad

Nota: n= 18

*p< .05

**p< .01

Interpretación:

Se observa que los datos correspondientes a la Fuerza adhesiva (Ketac) en el grupo control no cumple el supuesto de normalidad, asimismo en el grupo experimental se encontró normalidad en los datos bajo la prueba de Shapiro-Wilk al 99% de confianza.

Debido a estos resultados no se pudo utilizar la inferencia estadística paramétrica utilizando la prueba clásica de diferencia de medias T student, por lo que se utilizó la inferencia estadística no-paramétrica con la prueba de Mann Whitney.

Anexos: Ejecución del proyecto de investigación

FIG 17 Extracción de los dientes incisivos inferiores permanentes bovinos obtenidas directamente del centro de beneficio vacuna

FIG 18. (A) Dientes centrales inferiores bovinos extraídos

(B) Limpieza de los dientes.

FIG 19. Sumergidas en solución de GLUTARALDEHIDO al 2% por cuatro semanas.

FIG 20. (A) Corte a nivel del tercio medio (B) Eliminando el contenido pulpar con una lima endodóntica.

FIG 21. Raíces incrustadas en resina acrílica transparente químicamente activada con ayuda de una matriz de silicona.

FIG 22. Preparación final de las caras proximales para recibir los cuerpos de pruebas del grupo control y experimental.

FIG 23. Tratamiento y restauración del Grupo CONTROL (A) Profilaxis con pasta de piedra pómez. (B) Lavado y secado con papel absorbente. (C) Aplicación del Ketac primer. (D) Fotocurado del Ketac primer. (E) Ketac N100 llevado con una matriz de 2mm de diámetro y 2mm de profundidad.

FIG 24. Tratamiento y restauración del Grupo EXPERIMENTAL (A) Profilaxis con pasta de piedra pómez. (B y D) Lavado y secado con papel absorbente. (C) Aplicación del ácido poliacrílico al 10%. (E) Ketac primer. (F) Fotocurado del Ketac primer. (G) Ketac N100 llevado con una matriz de 2mm de diámetro y 2mm de profundidad.

FIG 25. (A1, A2, A3, A4) Pulimiento de las restauraciones del grupo CONTROL y EXPERIMENTAL con disco soflex (3M ESPE) desde grano grueso hasta grano fino. (B) Sellado con esmalte de uña incolora para prevenir la deshidratación y absorción externa de agua.

FIG 26 Termociclado (A) temperatura de 55ºC (B) Temperatura de 5ºC.

FIG 27. Máquina universal de ensayos.

FIG 28. Prueba de resistencia al cizallamiento.

MATRIZ DE CONSISTENCIA

Dedico este trabajo,

A Dios,

Por estar presente en toda mi vida. Y porque en cada paso estas presente llevándome de la mano a enfrentar mis miedos y juntos alegrarnos de mis triunfos…Gracias por tu amor infinito.

A mis orgullos,

Mis padres Lucio y Nelly, a quienes considero desde muy niña mis héroes, las persona que me enseñaron que es tener paciencia, pues tuvieron demasiada paciencia conmigo y con mi hermana, por darme ejemplos de honestidad, responsabilidad, puntualidad y el mayor de todos respeto a todos y a mí misma. Por darme un amor incondicional…Los amo demasiado.

A mi hermana,

Deyssi, por ayudarme en todo momento sin importar las circunstancias, por ser mi mejor y única amiga, confidente, consejera, sincera y compartimos desde siempre nuestro secretos…te amo mucho

A Catalina Romero y Teodoro Torres (in memoriam)

Mis abuelos personas maravillosas presentes de manera espiritual, ahora junto a Dios, nunca los olvidaré siempre estarán presentes en mi corazón, recordando siempre la promesa que te hice abuelita, eres y serás la persona más noble que conocí, siempre me engreías y cuidabas…los amo y nunca los olvidaré.

A Víctor Rivera y Rosalia Ponce

Mis abuelos por todo lo que me enseñaron, el amor que siempre me muestran, están a mi lado dándome por siempre sus mejores deseos, atentos de mis siguientes pasos…los amo con todo mi corazón.

AGRADECIMIENTO

Al Dr Marcos Díaz Peralta, a quien admiro mucho, por su dedicación profesional, el arte de enseñar, principalmente por su grandeza humana y gran corazón…gracias por su amistad.

Al Dr Rony Hidalgo Lostaunau, por sus conocimientos impartidos, apoyo, asesoría y consejos constantes a la distancia en múltiples ocasiones.

Al Dr Omar James Neyra Colchado, por su apoyo moral, orientación continua y disponibilidad en la asesoría de este trabajo.

Al CD Julio Benites Valencia, por el apoyo y orientación de mis dudas.

A la CD Laura Mendoza Hidalgo, por convertirse en una gran amiga…gracias por su apoyo, disponibilidad de tiempo y paciencia. Si no se hubiera llevado a cabo la investigación.

Al CD José Robles León, por su comprensión y ayuda.

A Juan Augusto Fernández Tarazona, por estar a mi lado desde mis primeros pasos en el mundo de la investigación…gracias por la complicidad, comprensión, apoyo y tu gran amor…Te amo

A mis tias Rosa Rivera, Domitila Torres y tío Hugo Laura, por quererme como una hija más, por su apoyo, por toda la paciencia, amor y disponibilidad incondicional…muchísimas gracias.

A mis Tias y Tios, por el aliento, confianza y no dejarme caer en este nuevo proyecto…les estoy agradecido.

A mis primos, por el apoyo constante, consejos, para terminar este nuevo proyecto…muchas gracias.

Al Med. Vet. César Chúmpitaz Sotomayor, por su aporte directo en la recolección e identificación de las muestras con respecto a la edad cronológica…gracias.

Al Ingeniero Mecánico Sebastían Lazo Ochoa y al Técnico Julián Cadenillas de la Facultad de Ingeniería mecánica de la Universidad Nacional de Ingeniería, por guiarme en el aspecto técnico de la máquina universal de ensayos y en la obtención de datos.

A mi amiga y colega Mónica Ruiz Medina, una persona maravillosa, quien ayudo desinteresadamente en la ejecución de la tesis.

A mi alma mater "Universidad de Huánuco", por albergarme en sus brazos, todos estos años de vida universitaria.

A todos aquellos amigos que de alguna manera, contribuyeron para la realización de este trabajo de investigación.

TESIS

Para optar el Título Profesional de: CIRUJANO DENTISTA

Autor:

Zady Jackeline Torres Rivera

Enviado por:

Juan Augusto Fernández Tarazona

HUÁNUCO -ERÚ 2011

ASESOR: José Francisco Robles León

CO-ASESOR: Rony Christian Hidalgo Lostaunau