Obtención de esquejes de boniato a partir de tubérculos mantenidos en condiciones semicontroladas de laboratorio
Tubérculos sanos de los clones de boniato,
Jewel, CEMSA 78-354 e INIVIT B-88, previamente
desinfectados, se colocaron en recipientes con agua corriente
para inducir su brotación, asperjándose foliarmente
a partir de la aparición de los brotes una vez a la semana
conformando los siguientes tratamientos: T1: asperjado
con solución de tiourea (1.0 g/L), T2:
asperjado con solución de ácido giberélico
(0.5 g/L) y T3: sin asperjar. Se efectuó el
corte de los brotes a los 30, 60, 80, 100 y 120 días
después de establecidos los tubérculos. El
número de brotes y yemas por tubérculo fue menor a
medida que aumentó el número de cortes y el
tiempo de
establecido el sistema; se
determinó que el valor de estos
parámetros está influenciado por el genotipo. La
aplicación de tiourea (1.0 g/L) influyó
negativamente en el número de brotes y yemas por
tubérculos.
Abstract
Sound tubers from Jewel, CEMSA 78-354 and INIVIT
B-88 sweet potato clones, previously desinfected were put in
flask containing running water in order to induce the shoots
emergence. Whit this aim they were sprayed once a week,
originating 3 different treatment: T1, with thiourea
(1.0 g/L) spray, T2 with giberellic acid (0.5 g/L)
spray and T3 without any substance addition. The
abscission of the formed shoots were done after 30, 60 80, 100
and 120 days from the date of tubers establishment. The recorded
parameters number of shoots and number of buds per tuber decrease
with the number of abcisions and with the time from the
establishment. At the same time it was found that this parameters
were influenced by the clone and that application of thiourea
(1.0 g/L) was negative for a number of shoots and number of buds
per tuber.
El boniato (Ipomoea batatas (L.) Lam.),
pertenece a la familia de
las Convolvuláceas, siendo la única de esta
familia que se
cultiva comercialmente como alimento, por poseer raíces
comestibles. Actualmente, el boniato ocupa el sexto lugar entre
los alimentos
más importantes del mundo (Jarret, 1991). En Cuba el
boniato se cultiva en casi todas las localidades, pues es un
cultivo que se adapta fácilmente a las condiciones
climáticas y de suelo, jugando un
gran papel desde el punto de vista económico y para la
alimentación humana; constituye una fuente
de carbohidratos,
vitamina A y calcio, de ahí que se pueda considerar un
alimento altamente energético; además, su follaje
rico en proteínas
y minerales es
un excelente alimento animal. Actualmente, las mayores
dificultades que se afrontan en este cultivo son
básicamente: la lentitud y altos costos de los
programas de
mejoramiento genético convencionales, la disponibilidad y
calidad de las
semillas, así como los bajos rendimientos que se obtienen.
La necesidad de satisfacer las demandas alimenticias de la
población, ha exigido la búsqueda de
alternativas para disponer de bancos de
semillas libres de plagas y enfermedades y con la
calidad requerida, entre los que se destacan: La
implantación del Sistema de Manejo Integrado de Plagas y
Enfermedades (SMIPE), la propagación a través del
cultivo de tejidos y otros
sistemas de
propagación acelerada. En nuestro trabajo
evaluamos un sistema para la obtención de esquejes de
boniato a partir de tubérculos mantenidos en condiciones
semicontroladas, valorando las posibilidades que este ofrece como
fuente de semillas.
Se seleccionaron tubérculos de los clones de
boniato Jewel, CEMSA 78-354 e INIVIT B- 88, los cuales se
agruparon de acuerdo a su peso en 3 grupos: 20-40 g,
40-60 g y mayores de 80 g, libres de daños físicos,
de plagas y enfermedades y de conocida pureza varietal, se
lavaron cuidadosamente con agua para eliminar los restos de
suelo, luego se sumergieron durante 10 minutos en una
solución de hipoclorito de sodio al 1% de cloro activo, y
se colocaron en cajas de polieturano, añadiéndoles
agua corriente hasta cubrir un cuarto del tubérculo para
provocar la emisión de brotes. Semanalmente, se
cambió el agua y
fueron asperjados con una mezcla de fungicidas compuesta por
benomil, zined y ridomil (1.0-2.5-5.0 g/L) respectivamente. A
partir de la aparición de los brotes, empleando un
diseño
completamente aleatorizado, se aplicó una vez a la semana
el asperjado al follaje de los diferentes clones con:
T1 solución de tiourea (1.0 g/L), T2
solución de ácido giberélico (0.5 g/L) y
T3 sin asperjar (testigo).
Se evalúo la fecha de brotación. El corte
de los brotes se realizó a los: 30, 60, 80, 100 y 120
días posteriores al establecimiento del sistema. Se
evaluaron las variables:
número de brotes por tubérculo, largo y peso de los
brotes y el número de yemas por brote y tubérculo
en cada uno de los cortes. Se aplicó un análisis de varianza de
clasificación doble para los factores variedad y sustancia
estimulante. Los datos obtenidos
en relación con la influencia del peso del
tubérculo y el número de cortes se procesaron
mediante un análisis de varianza simple y se
utilizó la prueba de comparación de medias de Tukey
para (p< 0.05) cuando existieron diferencias entre los
tratamientos. Para el procesamiento de los datos se empleó
el paquete estadístico Statistica, los datos
originales fueron transformados por la expresión n + 0.5.
El experimento fue repetido dos veces.
El inicio de la brotación de los
tubérculos varió en dependencia del clon empleado;
para el Jewel, el 76.4% de los tubérculos brotaron
dentro de los 8 días posteriores a su establecimiento y el
resto en el periodo comprendido en los primeros 15 días.
En el clon CEMSA 78-354, el 27.2% brotó en los
primeros 8 días, el 63.7% hasta los 15 días y el
resto hasta los 21 días. En el INIVIT B-88, no hubo
brotación en los primeros 10 días, 46.3% dentro de
los 15 días y el resto hasta los 25 días, estos
resultados coinciden con los obtenidos por Hall (1987) quien al
trabajar con diferentes clones de boniato determinó que el
tiempo de emergencia de los brotes a partir de tubérculos
estuvo en dependencia del genotipo empleado.
Tabla 1: Influencia del genotipo y la
aplicación de ácido giberélico y tiourea
sobre el número de brotes y yemas por tubérculo, el
número de yemas por brotes y el peso y largo de los
brotes.
|
| Clones |
|
| Solución |
|
|
Variables | Jewel | CEMSA 78-354 | INIVIT B-88 | AG3 (0.5 g/L) | Tiourea (1.0 g/L) | Testigo | CV (%) |
Brotes/ tubérculo | 7.44 a | 6.63 ab | 5.53 b | 7.66 a | 4.47 b | 6.94 a | 19.14 |
Yemas/ tubérculo | 86.97 a | 80.52 a | 55.38 b | 87.56 a | 62.72 b | 81.66 a | 16.60 |
Peso de los brotes (g) | 3.72 a | 4.87 a | 4.40 a | 3.75 a | 4.75 a | 4.49 a | 17.00 |
Yemas/ brotes | 11.79 a | 12.08 a | 11.22 a | 11.20 a | 11.66 a | 12.22 a | 8.40 |
Largo de los brotes (cm) | 25.04 a | 27.35 a | 30.89 a | 24.88 a | 24.91 a | 26.77 a | 24.50 |
No existió interacción entre los factores
CV: Coeficiente de Variación
El número de brotes y yemas por tubérculo
son variables de gran valor para evaluar la eficiencia del
sistema que se estudia, como se muestra en la
tabla 1, estas varían entre los clones estudiados;
alcanzando los mayores valores en el
clon Jewel, sin diferencias con el CEMSA 78-354 y
los más bajos se alcanzaron en el clon INIVIT B-88.
Al aplicar a los clones estudiados AG3 (0.5 g/L) o no
asperjarlos, el número de brotes y yemas por
tubérculo es significativamente mayor a cuando estos son
asperjados con tiourea, lo que indica un posible efecto
inhibitorio de la tiourea sobre estas variables. El peso y largo
de los brotes no varia entre los clones estudiados, ni cuando se
aplica AG3 (0.5 g/L) y tiourea (1.0 g/L). Hall (1987)
plantea que el número potencial de plantas y el
tiempo requerido para su propagación a partir de
tubérculos varía entre los diferentes cultivares de
boniato. Tompkins y Bowers (1970) al sumergir tubérculos
de boniato en soluciones con
ácido giberélico (250 a 1000 mg/L) antes de la
siembra, obtuvieron un incremento en el número total de
plantas y la disminución del tiempo requerido para
obtenerlas; sin embargo, estas plantas fueron finas y de tallo
anormal por lo que no podían ser mecánicamente
transplantadas (Tompkins et al.,1973). Hall (1994) al sumergir
antes de la siembra en canteros tubérculos de boniato de
los clones Georgia Jet y Jewel en soluciones de
ácido giberélico (0.5 y 1.0 mg/L) y soluciones
combinadas de benziladenina y ácido giberélico (5.0
y 50.0 mg/L), demostró que estas soluciones no tuvieron
una marcada influencia en la brotación; sin embargo, los
tubérculos sumergidos en solución de benziladenina
y ácido giberélico 50.0 mg/L produjeron un 48% de
plantas que brotaron más rápido que el testigo no
tratado. Jiménez (1998) reporta que al sumergir segmentos
de tubérculos de papa (Solanum tuberosum) en
soluciones de ácido giberélico (0.3 mM) durante una
hora se logra romper la dormancia de las yemas y provocar la
emergencia de los brotes en menor de tiempo.
Tabla 2: Influencia del tiempo de establecido el
sistema sobre el número de brotes y yemas por
tubérculo, yemas por brote, peso y largo de los
brotes.
Variables | Tiempo de establecido el sistema | |||||
30 | 60 | 80 | 100 | 120 | CV | |
Brotes/tubérculo | 3.22 a | 2.00 b | 2.20 b | 1.60 b | 1.36 b | 14.18% |
Yemas/brote | 11.17 a | 10.90 a | 11.30 a | 10.58 a | 9.30 a | 10.02% |
Yemas/tubérculo | 32.11 a | 21.45 bc | 25.20 ab | 17.40 bc | 12.82 c | 18.90% |
Peso del brote (g) | 5.27 a | 3.81 ab | 3.40 ab | 3.24 ab | 3.01 b | 16.90% |
CV: Coeficiente de Variación
Como se muestra en la tabla 2, existe una tendencia
general a disminuir el valor de las variables evaluadas a medida
que transcurre el tiempo de establecido el sistema y aumenta el
número de cortes realizados a los brotes,
obteniéndose valores significativamente menores del
número de brotes y yemas por tubérculos y peso de
los brotes a los 120 días con respecto a los 30
días, este comportamiento
indica que se produce un agotamiento progresivo de las reservas
de los tubérculos, lo cual se expresa a través de
una disminución de la vigorosidad de los brotes y la
capacidad para su producción.
Tabla 3: Influencia del peso de los tubérculos en
el número de brotes y yemas por tubérculo,
número de yemas por brotes y peso de los
brotes.
Variables | Peso de los tubérculos | |||
20-40
| 40-80 | > | CV | |
Brotes/ tubérculo | 5.50 b | 7.42 a | 8.75 a | 21.09% |
Yemas/ brotes | 10.56 a | 10.66 a | 11.47 a | 13.00% |
Yemas/ tubérculo | 52.00 b | 78.14 ab | 97.08 a | 17.47% |
Peso del brote (g) | 3.56 a | 3.78 a | 4.60 a | 29.00% |
CV: Coeficiente de Variación
El número de brotes y yemas por tubérculo
es significativamente menor cuando se emplean tubérculos
cuyo peso se encuentra entre los 20–40 g, al compararlos
con tubérculos mayores de 80 gramos (Tabla 3), el
número de yemas por brote y el peso de los brotes no
cambian significativamente al variar el peso de los
tubérculos. Tompkins y Horton (1973) encontraron que
tubérculos pequeños producen plantas de igual peso
que los de mayor tamaño; sin embargo, producen menor
número de plantas por tubérculo, lo cual coincide
con los resultados alcanzados en el presente trabajo. Hall (1986)
al trabajar con tubérculos de boniato del clon Georgia
Jet, obtuvo que el tiempo de brotación y la
producción de brotes por tubérculo no estuvieron
influenciados por el tamaño.
- El número de esquejes producidos por
tubérculos depende de la variedad utilizada. - La aplicación de tiourea (1.0 g/L)
provocó la disminución del número de
brotes y yemas por tubérculo. - Se produce una disminución en el número
y en el peso de los esquejes a medida que transcurrió el
tiempo de establecido el sistema.
4. Cuando se emplean tubérculos de peso
superior a los 40 g se obtiene mayor número y peso de
los esquejes por tubérculo.
1-. Hall, M.R. (1986) Presprouting, root size and
cutting related to plant production by bedded sweet potato
roots. HortScience 21 (4): 985-987.
2-. Hall, M. R (1987) Short duration presprouting
enhance sweet potato plant production. HortScience
22(2): 314.
3.- Hall, M. R. (1994) Early Sweet potato plant
production increased by GA3 and BA plus
GA4+7. HortScience 29 (2): 126.
4-. Jarret, R. (1991) Cultivo de Tejidos de Camote.
Publicaciones CIAT. Colombia. 20
p.
5-. Jiménez, E. (1998) Cultivo de ápices
y meristemos. En: Propagación y Mejora Genética de Plantas por Biotecnología. IBP. J. P. Ponce (edit.)
Universidad
Central de las Villas. 49 p.
6-. Tompkins, D. R and J.L. Bowers. (1970) Sweet
potato plant production as influenced by gibberellin and 2-
cloroethylphosphonic acid. HortScience 5: 84-85.
7-. Tompkins, D. R; R. D. Horton and W.A. Sistrunk.
(1973) Sprouting of sweet potato treaned with ethephon or
gibberellic. Arkansas Farm Res. 22: 10.
8-. Tompkins, D. R and R. D. Horton. (1973) Plant
production by sweet potato roots as influenced by ethephon.
HortScience. 8: 415-416.
Autores :
Angel Espinosa Reyes
autor para correspondencia
Orlando S. González Paneque
Juan José Silva Pupo
Universidad de Granma. Apdo 21. Bayamo. CP 85100.
Granma. Cuba.