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Manual de flebotomía (página 2)




Enviado por Lic. Eric Caballero J



Partes: 1, 2

15. Evite que los niños
toquen o jueguen con los equipos de la flebotomía.

  • Factores pre-analíticos que afectan
    las pruebas:

Es importante tener presente que existen muchos
factores que pueden afectar las pruebas de
laboratorio,
algunos de los cuales pueden ser evitados con una adecuada
orientación al paciente y una correcta técnica de
extracción sanguínea. A continuación
enumeraremos algunos de estos factores y recomendaciones al
respecto.

  • 1. La ansiedad y la tensión
    mental o física puede afectar los niveles de muchos
    componentes sanguíneos. Tal es el caso de las
    concentraciones de Prolactina, Cortisol, Catecolamina,
    Aldosteronas y Renina. También puede elevar la cuenta
    de leucocitos.

  • 2. Se recomienda evitar ejercicios
    físicos vigorosos durante 3 días previos a la
    toma de muestra, ya que pueden alterar los niveles de CPK,
    LDH, AST potasio, glucosa, lactato, prolactina y
    cortisol.

  • 3. El ritmo diurno de algunos fluidos
    corporales muestran fluctuaciones durante el día. Por
    ejemplo los niveles de cortisol son altos en la
    mañana, pero decrecen en la tarde. Los niveles de
    hierro tienden a caer durante el día.

  • 4. La situación dietética
    del paciente puede ser importante para ciertas pruebas. Tal
    es el caso de las variaciones en la concentración de
    lípidos después de una comida grasosa. El suero
    sanguíneo muestra una apariencia lechosa debido a la
    presencia de triglicéridos y quilomicrones. Estos
    sueros hiperlipidémicos influyen en las mediciones,
    por lo que se recomienda tomar muestra después de un
    periodo de ayuno, usualmente de toda la noche.

  • 5. La ingestión de etanol induce
    cambios en la composición de los lípidos
    corporales. De particular interés son las enzimas
    hepáticas, como la fosfatasa alcalina, transaminasas,
    gama glutamil transferasa y otros componentes como la
    glucosa, triglicéridos, uratos y lactato.

  • 6. El fumar puede producir variaciones
    en los resultados de algunos componentes como la lipasa,
    amilasa, colesterol, glucosa e igualmente afecta la
    absorción gástrica en la prueba de tolerancia a
    la glucosa.

  • 7. La cirugía y la
    inyección intramuscular provoca un aumento en la
    concentración de creatincinasa.

  • 8. La exploración rectal o la
    manipulación prostática, puede causar un
    aumento en la concentración del antígeno
    prostático específico.

  • 9. Los anticonceptivos orales afectan
    profundamente la actividad estrogénica y conducen al
    aumento de muchas proteínas como la tiroxina, cortisol
    y las hormonas sexuales.

  • 10. Medicamentos como barbitúrico
    y fenitoina, inducen enzimas hepáticas con valores
    elevados.

  • 11. Evite extraer sangre arriba de una
    inyección intravenosa previa, ya que las
    concentraciones de muchos compuestos pueden resultar
    erróneamente altos o bajos.

  • 12. Evite provocar hemólisis
    durante el proceso de extracción o llenado de los
    tubos, lo cual afectará algunas pruebas relevantes. La
    hemólisis puede ocurrir también por exceso de
    residuos del alcohol utilizado durante la desinfección
    del sitio a puncionar. También puede ser debido a un
    incremento en la fragilidad capilar y alto volumen de
    células empacadas, especialmente en recién
    nacidos.

  • 13. Evite agitar con fuerza los
    capilares para microcolección de muestra, ya que puede
    provocar su hemólisis.

  • 14. Evite puncionar en un área
    con hematoma, fístulas, quemaduras, escoriaciones de
    la piel, cicatrices o del costado en que se ha realizado
    mastectomía reciente.

  • 15. Verifique condiciones de ayuno para
    las pruebas que lo requieran.

  • 16. Las pruebas seriadas como curvas de
    tolerancia, post-prandial, post-ejercicios, etc. deben
    monitorearse en el tiempo adecuado, por lo que tienen
    prioridad.

  • 17. En el caso de las pruebas seriadas,
    deben rotularse los tubos con la hora de toma de la
    muestra.

  • 18. Es recomendable preguntar al
    paciente si existen restricciones para la flebotomía
    (Mastectomía, etc.).

  • 19. Colocar la firma responsable a todos
    los formularios.

3.1 Interferencias:

  • Los tubos con anticoagulante deben invertirse
    suavemente y colocarlos en posición vertical, para
    evitar el contacto prolongado con el tapón de
    caucho.

  • Algunos compuestos se pueden adsorber al
    tubo. Tal es el caso de la hormona ACTH y la paratiroidea que
    se adsorben al vidrio con facilidad, por lo que se recomienda
    tubos de plástico.

  • Los separadores de suero se utilizan para
    separar el suero libre del coágulo de sangre. Estos
    pueden ser de gel de silicón, poliester o perlas de
    vidrio. En algunos casos debido a problemas en la
    centrifugación y a altas temperaturas, pueden quedar
    gotas de gel dentro del suero. Se ha demostrado que estas
    gotas de gel pueden interferir con algunas mediciones. Es
    conocido que la progesterona se reduce apreciablemente cuando
    se almacena sobre gel por varios días.

Igualmente ocurre con la lidocaina, fenobarbital,
fenitoina y carbamazepina.

  • Algunas hormonas polipeptídicas de
    bajo peso molecular, como la ACTH, glucagón, gastrina
    y otras hormonas intestinales, se destruyen
    rápidamente por enzimas presentes en la sangre. Por lo
    que es necesario centrifugar la muestra a baja temperatura,
    10 minutos después de la toma y almacenar el suero o
    plasma inmediatamente a –20 C.

  • Aquellos tubos con anticoagulantes deben ser
    llenados exactamente hasta la marca, cualquiera sea el
    método que se utilice para extraer la sangre, para
    evitar que la concentración del anticoagulante sea
    demasiada alta, tal que afecte el sistema de
    medición.

Identificación
del paciente

Todas las muestras deben ir acompañadas de
una solicitud debidamente formulada. La solicitud debe contener
la siguiente información:

  • a) La identificación completa del
    paciente:

  • Nombre completo

  • Sexo

  • Número de cédula o seguro
    social

  • Datos para su localización

  • Sala y número de cama si está
    hospitalizado

  • Número de teléfono si es
    ambulatorio

  • b) Médico solicitante:

  • Nombre completo

  • Especialidad

  • Registro

  • c) Pruebas que se realizarán

  • d) Es deseable que la solicitud incluya
    información clínica de utilidad

  • Diagnóstico

  • Ingestión de drogas

  • Restricciones especiales

  • e) Fecha de orden y fecha de
    colección

  • f) Iniciales del flebotomista

g) Hora de extracción.

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  • LA PREPARACION DEL PACIENTE:

La primera impresión y las observaciones
inmediatas pueden ser útiles para el flebotomista.
Ayudarán a establecer el tipo de paciente, el sitio de la
punción, las precauciones necesarias y la forma correcta
para el trato del paciente.

El paciente espera de usted un trato profesional,
cortés y de comprensión, ya que él
está frente a usted porque le aqueja su salud. La
comunicación afectiva es determinante en la
relación con el paciente.

Hable con el paciente. Explique el procedimiento a
seguir.

  • Identificación del
    paciente:

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La identificación correcta del paciente es
obligante. Pregunte su nombre completo y número de
cédula o seguro social.
Si se trata de un paciente hospitalizado, observe su brazalete de
identificación y su nombre en la cama.

  • Vigilancia del paciente:

Observe si el paciente está sudoroso,
agitado, sedado.

  • Personalidad del paciente:

Observe si el paciente es agresivo, arrogante,
conflictivo.

Evite cualquier discusión con el paciente.
De ser así, llame al jefe del laboratorio. Trate de
calmarlo y sea comprensivo. Sin embargo, usted siempre tiene la
opción de no atender un paciente agresivo que pueda causar
lesión a usted o a sí mismo. Comunique de
ésta situación a la persona encargada
de la sala.

Si se trata de un niño agresivo o
combativo, solicite ayuda para hacer la extracción.

  • Etica:

En todo momento debe mantener la ética y
confidencialidad del paciente y sus pruebas. Los Códigos
de Etica de los trabajadores de la salud, prohiben estrictamente
que los aspectos de salud del paciente sean divulgados con
propósitos no profesionales.

Se deben evitar críticas, temas
políticos, atención de asuntos personales y
conversaciones que distraigan o dilaten la adecuada
atención del paciente.

No de preferencia a familiares ni amistades, tal
que afecte la atención de los pacientes.

Preparación
del equipo

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  • Tubos de colección: Los tubos
    están predeterminados para llenarse con un determinado
    volumen de sangre por vacío. El tapón de caucho
    está codificado por color, de acuerdo a su uso o sus
    aditivos.

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TUBO CON TAPON ROJO

USO: Química, Inmunología, Banco de
sangre

ADITIVO: Ninguno

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TUBO CON TAPON ROJO

USO: Química

ADITIVO: Gel – Separador

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TUBO CON TAPON MORADO

USO: Hematología

ADITIVO: Anticoagulante EDTA

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TUBO CON TAPON CELESTE

USO: Pruebas de Coagulación

ADITIVO: Anticoagulante Citrato de
sodio

  • Agujas: Están numeradas dependiendo de
    su calibre. Para colección de sangre para hemogramas,
    se recomienda una aguja de un diámetro de 0.8 mm ( 21G
    ) para evitar daño a las células. Las agujas de
    0.9 mm a 1.1 mm de diámetro ( 20G – 19G ) se
    utilizan normalmente para punción venosa en
    adultos.

  • Jeringuillas: De 3, 5, 10 y 20 cc

  • Adaptador para tubos-Vacutainer: Se utilizan
    para tubos al vacío.

  • Torniquete: Recomendable de 2 tamaños
    para adultos y niños.

  • Alcohol : Etílico o
    Isopropílico al 70%.

  • Algodón

  • Gasa

  • Guantes

  • Curita o venda adhesiva

  • Iodo.

  • Frascos para hemocultivos.

El procedimiento de
la flebotomía

La muestra debe
tomarse correctamente y bajo las condiciones más
favorables para evitar errores. Esto incluye la absoluta
identificación del paciente, el sitio a puncionar y el
volumen a
colectar. El paciente debe estar en posición
moda, de preferencia en una silla especial para
venopunción con descanso para los brazos y si está
en cama, preferiblemente acostado.

  • Selección del sitio a
    puncionar:

Al proceder a seleccionar el sitio a puncionar,
evite áreas con hematoma, fístulas, quemaduras,
escoriaciones de la piel o
cicatrices. Si se trata de un paciente hospitalizado evite tomar
muestra de un brazo que se esté utilizando con venoclisis
o del costado en que se ha realizado una mastectomía
reciente.

  • La palpación:

Antes de proceder a puncionar, se debe escoger la
vena. La mejor manera es realizando una palpación de las
mismas para esa decisión. Para ello coloque el torniquete
3 a 4 pulgadas por arriba del sitio seleccionado, para
visualizarlas mejor. Debe tener presente en no mantener el
torniquete por más de 3 minutos, para evitar la
hemoconcentración.

Las venas más utilizadas para la
venopunción, están localizadas en el área
antecubital. Entre éstas tenemos:

  • a) Vena Cubital: Es la más
    larga y gruesa de todas y es la preferida por bordear la
    musculatura del brazo.

  • b) Vena Cefálica: Tiene
    iguales características de la anterior, pero es un
    poco menos gruesa.

  • c) Vena Basílica: Es
    más pequeña que las anteriores. Esta vena
    está cerca de la arteria braquial, por lo que su
    punción es riesgosa y su área es más
    sensible y dolorosa para el paciente.

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Al palpar hágalo con la punta de sus
dedos, tratando de seguir el rastro de las venas. Aquí
también son útiles sus conocimientos en la anatomía de las venas
de las extremidades superiores. En ocasiones si no visualiza la
vena, puede forzar la sangre dentro de
la vena a través de un suave masaje de abajo hacia
arriba.

PALPACIÓN DE LAS VENAS

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  • La Descontaminación:

Una vez que se ha decidido por la vena a
puncionar, debe proceder a descontaminar el área con
alcohol
etílico o isopropílico al 70% utilizando algodón
y con movimientos circulares del interior al exterior. Debe tener
presente que una vez realizada la descontaminación, no
debe volver a tocar el área venosa.

DESCONTAMINACION DEL AREA

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  • La punción venosa:

Ahora está preparado para realizar la
extracción sanguínea.

El brazo debe estar preferiblemente en
posición cómoda horizontalmente. Con el torniquete
en posición, haga que el paciente cierre y abra el
puño de 3 a 5 veces para bombear mejor la sangre, y luego
que mantenga el puño cerrado.

Si se trata de un niño, es recomendable
colocar 2 dedos de la mano, debajo del codo del paciente, para
evitar que doble el brazo durante la extracción.

  • Extracción con jeringuilla:

Cuando vaya a proceder a realizar la
extracción con jeringuilla, usted debe tener presente el
calibre a utilizar y el tamaño de la jeringuilla
según el volumen a extraer.

  • a) Coloque la punta de la aguja en un
    ángulo de 15 a 30 grados sobre la superficie de la
    vena escogida y atraviese la piel con un movimiento firme y
    seguro, hasta el lumen de la vena.

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  • b) Apretando firmemente la jeringuilla,
    debe jalar el émbolo con movimiento continuo para
    extraer la sangre hasta el volumen requerido.

Evite presionar fuertemente la aguja durante la
extracción.

  • c) Afloje el torniquete para que la
    sangre fluya mejor y remueva la aguja del brazo con
    movimiento suave al terminar de colectar, sin apretar el
    área de la punción con el algodón.

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  • d) Presione el algodón sobre el
    sitio de la punción aplicando una presión
    adecuada y no excesiva para evitar la formación de
    hematoma.

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  • e) Llenar los tubos en su orden. Ver
    página 27.

  • f) Descarte la jeringuilla y aguja en un
    contenedor apropiado.

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  • g) Colocar una curita o venda en el
    sitio de la punción.

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  • Problemas durante la extracción
    venosa.

Diversos problemas
pueden surgir durante la colección de sangre venosa y
pudiera no obtenerse sangre o su colección sea
incompleta.

a) Colocación correcta de la aguja:

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Coloque la aguja con el bisel hacia arriba

  • b) Cambio en la posición de la
    aguja. Movimiento de retroceso que

la saca del lumen venoso.

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c) Movimiento
hacia delante que atraviesa la vena.

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  • c) Movimiento de la aguja, tal que el
    bisel de la aguja quede contra la pared de la vena, afectando
    la entrada de la sangre

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d) Colapso de la vena:

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En estos casos, afloje el torniquete para
incrementar el flujo sanguíneo, remueva la aguja
ligeramente y vuelva a redireccionarla.

  • d) Formación de hematoma:

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Si se forma un hematoma bajo la piel adyacente al
sitio de la punción, afloje el torniquete y retire la
aguja. Aplique presión
firmemente sobre el hematoma.

  • e) Sangre arterial:

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Pudiera suceder que se atraviese una arteria, en
estos casos la sangre se observa de un color rojo
brillante. Retire la aguja y aplique presión por 5
minutos.

6.2.1.2 Como prevenir los hematomas:

  • Puncione solamente la pared superior de la
    vena.

  • Remueva el torniquete antes de remover la
    aguja.

  • Escoja las venas superficiales mayores.

  • Aplique presión sobre el sitio de la
    punción.

  • Como prevenir la hemólisis:

La hemólisis de una muestra
sanguínea puede ocurrir por diversas razones entre las que
se pueden enumerar:

  • a) Trauma con una aguja de calibre muy
    pequeño.

  • b) Por contaminación con agentes
    antisépticos.

  • c) Agitación violenta o excesiva
    de los tubos.

  • d) Demasiado tiempo en ser analizadas
    las muestras o en ser separado el coágulo de
    sangre.

  • e) Incremento en la fragilidad capilar
    de los eritrocitos o alto volumen de células
    empacadas, especialmente en neonatos.

  • f) Presión excesiva para mejorar
    el flujo sanguíneo.

  • g) En tubos no llenados al vacío,
    puede ocurrir hemólisis al llenarlos haciendo una
    fuerte presión sobre el émbolo provocando un
    chorro de sangre muy fuerte.

Los componentes más afectados son aquellos
cuya concentración son más altas en las células
que en el plasma, por ejemplo, ión potasio, fosfato,
deshidrogenasa láctica, aspartato aminotransferasa,
hierro
sérico, etc De más está decir que la
hemólisis afecta en diversa medida la lectura
espectrofotométrica de los componentes
sanguíneos.

La hemólisis puede ser prevenida tomando
en cuenta los siguientes elementos:

  • a) Mezcle los tubos con aditivos
    anticoagulantes lentamente por 5 a 10 veces, inmediatamente
    después de ser llenado el tubo.

  • b) Evite extraer sangre de un
    hematoma.

  • c) Acerque el bisel de la aguja a la
    pared interna del tubo, para evitar el choque fuerte de la
    sangre contra el fondo del tubo.

  • d) Esté seguro que el sitio de la
    punción esté seco del antiséptico.

  • e) Evite una punción
    traumática.

  • f) Evite la agitación vigorosa de
    los tubos.

  • g) Evite el calentamiento de los
    tubos.

  • Causas de la
    Hemoconcentración:

  • a) Aplicación prolongada del
    torniquete. La presión hidrostática causa que
    algo de agua y elementos filtrables escapen al espacio
    extracelular. Esto tiene efectos también sobre el
    empaque celular.

  • b) Masaje vigoroso del sitio a
    puncionar.

  • c) Esclerosis u obstrucción
    venosa.

  • Extracción con vacutainer:

En ocasiones, especialmente cuando se requiere
colectar muchos tubos para diversas pruebas en secciones
distintas, es sumamente útil el uso del adaptador
vacutainer o similar, el cual nos permite llenar cuantos tubos
sean necesarios.

En estos casos, una vez hecha la punción,
sostenga firmemente el vacutainer con una mano y con la otra
inserte, llene y retire cuantos tubos requiera.

EXTRACCION CON VACUTAINER

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  • La Punción Capilar:

La sangre de la llamada punción capilar es
una mezcla de sangre de arteriolas y venosa, más que de
capilar. La obtención de sangre por punción capilar
es particularmente útil en las siguientes
circunstancias:

  • a) Si la punción venosa es
    peligrosa para el paciente.

  • b) No se puede accesar las venas
    recomendadas.

  • c) Las venas se están utilizando
    para administrar medicamentos.

  • d) El volumen de sangre requerido no
    justifica una extracción venosa.

Estas circunstancias se aplican a:

  • a) Neonatos.

  • b) Lactantes.

  • c) Niños.

  • d) Adultos con quemaduras severas.

  • e) En pacientes muy obesos.

  • f) En caso de terapias intravenosas.

La punción cutánea se puede llevar
a cabo en:

  • a) La superficie más lateral o
    más medial de la planta del pie.

  • b) La superficie medial plantar del dedo
    gordo del pie.

  • c) La superficie lateral del dedo medio
    o anular, preferiblemente.

  • d) El lóbulo de la oreja,
    evitando la mejilla.

TIPOS DE PORTA-LANCETA

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  • El procedimiento de la Punción
    Capilar :

  • a) Una vez escogido el sitio de la
    punción, puede dar un ligero masaje al área
    para concentrar la sangre.

  • b) Limpie el sitio con alcohol
    etílico o isopropílico al 70%.

  • c) Con una mano sostenga el dedo o
    área a puncionar y con la otra sostenga la
    lanceta.

  • d) Haga la punción con la
    lanceta, realizando un movimiento rápido, firme y
    profundo.

  • e) Después de puncionar,
    descartar la primera gota de sangre, que contiene
    líquido tisular, limpiándolo con el
    algodón.

  • f) Presione el dedo para hacer salir la
    sangre, procurando sea de manera ininterrumpida.

  • g) Una vez tomada la muestra, sellar los
    tubos capilares con sellador o los microtubos con su
    tapa.

  • h) Los microtubos y capilares con
    anticoagulantes deben ser invertidos suavemente por lo menos
    10 veces para evitar su coagulación.

  • i) Coloque el algodón sobre el
    sitio puncionado haciendo presión para parar el
    sangramiento.

SITIO RECOMENDADO PARA LA PUNCION CAPILAR

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6.3.1.1 Consideraciones adicionales de la
punción capilar:

  • a) La mala circulación causa
    modificaciones en la concentración de ciertos
    componentes sanguíneos, por ejemplo el ión
    potasio y del fosfato, debido a la contaminación con
    líquido tisular, causada por la presión que se
    aplica para obtener la muestra.

  • b) Al escoger el sitio de la
    punción, evite hacerlo en dedos con quemaduras,
    excoriaciones o cianóticos.

  • c) Las muestra para mediciones de Ph y
    gases sanguíneos en tubos capilares de vidrio
    heparinizados deben ser llenados sin formación de
    burbujas de aire. Sellar inmediatamente un extremo del tubo y
    coloca una pequeña barra magnética en
    dirección ascendente dentro del tubo. Colocar en agua
    con hielo, evitando la contaminación de la
    muestra.

PUNCION CAPILAR CON PORTA-LANCETA

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  • Colección en Neonatos:

  • a) El pie del neonato es el sitio
    apropiado para colectar muestra sanguínea por
    punción capilar.

  • b) Es recomendable la pre-limpieza del
    pie con una gasa tibia para incrementar el flujo
    sanguíneo.

  • c) El siguiente diagrama ilustra con el
    color verde los sitios de punción recomendados.

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  • d) Limpie el área seleccionada
    con alcohol etílico al 70%.

  • e) Mantenga firmemente el pie del
    neonato para evitar cualquier movimiento.

  • f) Usando una lanceta estéril
    realice la punción con movimiento rápido, firme
    y profundo.

  • g) Limpie con el algodón la
    primera gota obtenida. Utilice una ligera presión para
    obtener las gotas de sangre requeridas. No haga
    presión excesiva o masajes, que puedan provocar que la
    sangre se diluya con líquido tisular.

  • h) Llene los microtubos requeridos.

TUBOS DE MICRO-COLECCION

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  • i) Al terminar mantenga presión
    sobre el sitio de la punción con gasa o algodón
    para parar el sangramiento.

  • j) Descarte la lanceta en un
    receptáculo apropiado.

  • Orden de llenado de los tubos:

La sangre coleccionada debe ser llenada en un
orden específico para evitar contaminación cruzada de aditivos entre los
tubos. El orden recomendado es el siguiente:

  • a) El primer tubo a ser llenado es el de
    hemocultivo, si también se ha ordenado ésta
    prueba.

  • b) Los siguientes tubos corresponden a
    los tubos sin aditivos, tal es el caso de los tubos con
    tapón rojo para química y serología.

  • c) Los tubos para pruebas de
    coagulación, indicados por el tapón celeste.
    Estos tubos Nunca pueden ser los
    primeros.

  • d) Los siguientes tubos son aquellos que
    contienen aditivos especialmente para evitar
    coagulación, así:

d1 – Tubo con heparina (Tapón verde
oscuro)

d2 – Tubo con EDTA (Tapón color
lavanda).

d3- Tubo con Oxalato (tapón verde
claro).

Nota: Los tubos con aditivos deben ser
rápida y completamente mezclados.

  • Consideraciones en pacientes
    hospitalizados:

Los pacientes hospitalizados constituyen el mayor
reto para el flebotomista. Ello incluye circunstancias muy
especiales tales como pacientes gravemente enfermos, en ocasiones
en estado de
coma, con equipo de soporte respiratorio, quemaduras graves,
pacientes psiquiátricos, neonatos en incubadoras, etc que
exigen un esfuerzo especial al personal
encargado de la extracción de sangre.

Por todo lo anterior enumeraremos algunas
recomendaciones que han de ser tenidas en cuenta al momento de
atender estos pacientes:

  • a) Debe haber una plena
    identificación del paciente. Si el paciente
    está despierto, pregúntele su nombre. En todo
    caso debe comprobar la identificación del paciente con
    el nombre colocado en la cama y su brazalete de
    identificación que puede estar en el brazo o el
    tobillo.

  • b) Tome en cuenta todos los aspectos
    explicados referente a pacientes con venoclisis o que reciben
    drogas intravenosas.

  • c) Pida ayuda cuando va a atender
    pacientes psiquiátricos o agresivos, para evitar
    causarle un daño durante la punción.

  • d) Limpie con alcohol el torniquete
    después de cada extracción.

  • e) Siga las instrucciones de
    bioseguridad con todos los pacientes, especialmente las
    indicadas en la entrada de las salas de pacientes
    potencialmente peligrosos.

  • f) No colecte sangre de una extremidad
    edematosa.

  • g) En caso de pacientes con linea
    arterial, las muestras de sangre deben ser extraidas por el
    médico, a excepción de la muestra por tiempo de
    coagulación, que debe ser tomada del otro brazo y lo
    cual puede hacerlo el técnico.

  • Extracción sanguínea en
    pacientes con venoclisis:

A pesar de que éste procedimiento no
está indicado
para ser realizado por el personal de
flebotomía del laboratorio clínico, hemos
adicionado el mismo con la intención de que el personal
conozca el procedimiento para extraer sangre por debajo
del sitio intravenoso.

  • a) Cierre la llave del fluido
    intravenoso, al menos 2 minutos antes de hacer la
    punción.

  • b) Aplique el torniquete por debajo del
    sitio intravenoso.

  • c) Seleccione una vena diferente a la
    utilizada en la conexión intravenosa existente.

  • d) Realice la punción. Deje
    escapar aproximadamente 5 ml de sangre y descártela
    antes de colectar la muestra para los exámenes.

  • e) Retire el torniquete.

  • f) Aplique presión sobre la vena
    para parar el sangramiento.

  • g) Abra la llave del fluido
    intravenoso.

  • h) No se retire sin confirmar que el
    paciente está bien.

Nota: No se debe colectar sangre obtenida
de un brazo con fístula, cánula o heparina, sin
consultar al médico tratante o a la enfermera.

  • El Etiquetado:

El etiquetado de los tubos debe realizarse
inmediatamente posterior a la extracción
sanguínea. Es incorrecto rotular los tubos previamente a
la punción. En el caso de pacientes hospitalizados,
ésta tarea se realiza en la cama del paciente.

El etiquetado puede incluir:

  • a) Nombre del paciente

  • b) Número de cédula o
    seguro social, el cual debe coincidir exactamente con el
    formulario de solicitud de examen.

  • c) Fecha de la punción. Colocar
    la hora si es muestra seriada.

  • d) Iniciales del flebotomista.

Monografias.com

Una muestra del etiquetado de los tubos puede ser
el siguiente:

Monografias.com

  • CUIDADOS DEL PACIENTE POSTERIOR A LA
    EXTRACCIÓN:

Una vez realizada la extracción, es
nuestra responsabilidad asegurarnos que el paciente se
encuentra apto para levantarse de la silla y retirarse. Algunos
pacientes sufren de mareos, debilitamiento y desmayo posterior a
una extracción.

Para evitar que se caiga y se haga daño,
debemos observarlo y preguntarle si está bien, antes de
indicarle que se retire.

Si el paciente está sudoroso, con la cara
muy blanca o tiembla, pudiera necesitar nuestra ayuda, ya sea
haciéndole oler sales de amonio o alcohol. En caso de
posible desmayo, debemos indicarle que coloque la cabeza entre
sus piernas, para ayudar a irrigar de sangre su cerebro.

Si fuera necesario, podemos acostarlo hasta que
se reponga.

En el caso de los niños, debemos
asegurarnos que mantengan la curita o venda para evitar
sangramiento posterior.

Los pacientes especialmente los ancianos que
están en ayunas, debemos darle indicaciones para que
pronto desayunen, a fin de evitar desmayos.

Transporte de la
muestra

Una vez que se haya colectado la muestra
sanguínea, ésta debe ser llevada pronto al
laboratorio para su procesamiento. Algunas pruebas exigen que el
suero sea separado cuanto antes del coágulo
sanguíneo, para evitar alteraciones en la
composición o niveles de algunos metabolitos.

De más está decir que la muestra
debe ser acompañada por su correspondiente formulario de
solicitud de examen.

AL TERMINAR SU LABOR

Una vez terminada su labor en la
extracción de muestras sanguíneas el personal tiene
la obligación de dejar limpio y ordenado su puesto, con el
fin de que el mismo pueda ser utilizado por otro personal con las
condiciones apropiadas de trabajo.

Esta labor incluye la limpieza del área,
el ordenamiento de los tubos, jeringuillas y agujas sobrantes y
la colocación de restos de basura en su
recipiente.

Al terminar sus funciones, debe
informar al jefe de sala o a la persona asignada para su relevo,
con el fin de mantener la continuidad de las labores.

Literatura
recomendada

1. Garza D and Becan-McBride K. Phlebotomy
Handbook
, 2nd Ed.

Norwalk, Connecticut: Appleton and Lange: 1989.

2. National Committee for Clinical Laboratory Standards;
Procedures for

the Collection of Diagnostic Blood Specimens by
Venipuncture
,

3rd Ed. Document H3-A3. Vol. 11 No. 10, 1991.

3. National Committee for Clinical Laboratory Standards.
Procedures for

the Collection of Diagnostic Blood Specimens by Skin
Puncture
.

Document H4-A3. Vol. 11 No. 11, 1991.

4. Phelan, S. Phlebotomy Techniques: A Laboratory
Workbook
. Chicago,

Ill.: American Society of Clinical Pathologists: 1993.

5. University of Iowa Hospital and Clinics, Pediatric
Phlebotomy

Training Manual. 1994.

6. University of Iowa Hospital and Clinics, Phlebotomy
Training Manual
.

1994.

7. Mejoría Contínua de la
Calidad
. Guía para los laboratorios
clínicos de

América
Latina.

Editores : M.L.Castillo de Sánchez y
M.E.Fonseca Yerena en

colaboración con COLABIOCLI. Editorial
Médica Panamericana.

8. Virtual Phlebotomy: A Computer Aided Course of
Instruction.

http://www.parsons.umaryland.edu/~vguy/phleb.htm

9. California Phlebotomy Training.

http://www.scpt.com/PhlebotomyViews.html

10.Virtual Hospital: CLIA . Pre-Analytical
Factors Affecting Laboratory

Results.

http://www.vh.org/Providers/CME/CLIA/Phlebotomy/Phlebotomy.html

11. Center for Phlebotomy Education.

http://www.phlebotomy.com

12. Medstat Utah.

http://www.medstat.med.utah.edu/webpath/tutorial/PHLEB/PHLEB.html

 

AGRADECIMIENTO:

Los autores expresan su especial agradecimiento
al Lic. Darío Paredes y a la Lic. Luzmila Lamela, por sus
atinadas observaciones en la elaboración de éste
Manual.

 

 

 

 

Autor:

Lic. Eric Caballero J.

Coordinador

Lic. Eric Gilkes

Lic. Juana de Cooper

Partes: 1, 2
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