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Rotylechus sp (página 2)



Partes: 1, 2

Especies

localidad

hospedante

Rotylenchus
agnetis

Potenza, Italy

Ruscus aculeatus (butcher"s
broom)

R. cazorlaensis

Cazorla, Spain

Quercus faginea (Portuguese
oak)

R. cazorlaensis

Cazorla, Spain

Quercus faginea (Portuguese
oak)

R. eximius

Huelva, Spain

Olea europaea sp. sylvestris (wild
olive)

R. eximius

Brindisi, Italy

Pistacia lentiscus
(lentisc)

R. goodeyi

Cádiz, Spain

Olea europaea sp. sylvestris (wild
olive)

R. incultus

Bollullos, Spain

Vitis vinifera (grapevine)

R. incultus

Niebla, Spain

Vitis vinifera (grapevine)

R. laurentinus

Torre Canne, Italy

Pistacia lentiscus
(lentisc)

R. laurentinus

Zahara, Spain

Pistacia lentiscus
(lentisc)

R. jaeni comb. n.

Santa Elena, Spain

Quercus suber (cork tree)

R. magnus

Lubia, Spain

Quercus robur (pedunculate
oak)

R. magnus

Arévalo, Spain

Ilex aquifolium (holly)

R. montanus sp.
n.

Trentino, Italy

Malus domestica (apple)

R. robustus

Michigan, USA

desconocido

R. uniformis

Bruges, Belgium

desconocido

R. uniformis

Ghent, Belgium

desconocido

R. uniformis

Poppel, Belgium

desconocido

R. uniformis

Elst, the Netherlands

desconocido

R. unisexus

Seville, Spain

Citrus aurantium (citrus)

Rotylenchus sp. 1

Moscow, Russia

desconocido

Especies y
distribución

Fuente: © Bayer CropScience 2007

CULTIVOS QUE ATACA

Los nematodos espirales son ectoparásitos que
pueden entrar parcialmente a las raíces. El nematodo
espiral ha sido notificado como una plaga de la lechuga solamente
en california.

Rotylenchus robustus Filipjev es la
única especie de los géneros de nematodos
espirales, Rotylenchus y Helicotylenchus, que
parasitan lechuga, zanahoria, guisantes, coles de bruselas y
coliflor son buenos huéspedes, mientras que acelga,
espinacas y remolacha rojas son malos huéspedes. El
nematodo ha sido asociado con el decaimiento de las plantas
ornamentales (SFA, 2001).

PRINCIPALES CULTIVOS A LOS QUE AFECTA

  • PALTO (Persea americana
    – Lauraceae)

  • ARROZ (Oryza sativa
    Poaceae)

  • BAMBÚ (Bambusa
    vulgaris
    – Poaceae)

  • BANANO (Musa acuminata x
    Musa balbisiana AAA
    – Musaceae)

  • CACAO (Theobroma cacao
    – Sterculiaceae)

  • CAÑA DE AZÚCAR
    (Saccharum officinarum – Poaceae)

  • COCOTERO (Cocos
    nucifera
    – Arecaceae)

  • COLIFLOR (Brassica oleracea
    Brassicaceae)

  • GUAYABA (Psidium
    guajava
    – Myrtaceae)

  • LIMA PERSA (Citrus
    aurantifolia
    – Rutaceae)

  • MAIZ (Zea mays –
    Poaceae)

  • MANGO (Mangifera indica
    – Anacardiaceae)

  • MARAÑÓN
    (Anacardium occidentale – Anacardiaceae)

  • MELOCOTÓN (Prunus
    persica
    – Rosaceae)

  • MELON (Cucumis melo –
    Cucurbitaceae)

  • NARANJA (Citrus sinensis –
    Rutaceae)

  • PAPA (Solanum tuberosum
    Solanaceae )

  • PAPAYA (Carica papaya
    Caricaceae)

  • PEPINO (Cucumis sativus –
    Cucurbitaceae)

Ciclo de la enfermedad y epidemiologia:

Se carece de estudios detallados del ciclo de vida de
R. robustus. Como ectoparásito, permanece fuera
de la raíz del huésped, alimentándose en
cualquier parte del sistema radicular excepto la punta de las
raíces. Se alimenta de las sustancias de las celular
epidérmicas y en los pelos de las raíces, y
también más profundamente en raíces en
células del parénquima cortical. Las picaduras
matan y secan a las células, que se vuelven amarillentas y
mas tardes pardas. La necrosis sigue estando restringida a las
proximidades del sitio de alimentación. Las hembras
adultas ponen huevos en el suelo alrededor de las raíces.
Todos los estados juveniles y adultos permanecen vermiformes. Se
producen machos y presumiblemente participan en la
reproducción sexual. La reproducción de R.
robustus
en lechuga tiene lugar igualmente bien entre 18.5 y
24 °C.

Control

Limitada información sobre el tipo de
huésped sugiere que los cultivos de quenopoiaceas pudieran
ser útiles como cultivos de rotación para reducir
los niveles de población antes de plantar las lechugas. La
fumigación pre plantación del suelo controla R.
robustus
en lechuga y otros cultivos (SFA, 2001).

Sintomatología
y daños

Rotylenchus sp. ectoparásito migratorio,
cuyos daños en el sistema radicular provocan, en general,
en los cultivos una falta de crecimiento, escaso vigor, amarilleo
y perdida de hojas, entre otros (BARRIGA, 1965)

  • Síntomas:

Las picaduras causan necrosis de las células y
sistema radiculares raquíticos. Las lesiones pueden unirse
y formar áreas necróticas visibles en las
raíces. En áreas infestadas en campo, con 5000
nematodos por 100 cm3 de suelo recogido alrededor de las
raíces (SFA, 2001).

Daño:

Se ve reflejado principalmente en las partes
aéreas de la planta y se manifiesta con un menor
crecimiento, síntomas de deficiencias en nutrientes como
amarillamiento del follaje, marchitamiento excesivo en tiempo
cálido o seco, una menor producción de la planta y
una baja calidad de los productos (BAYER, 2007).

Modo de vida y relación
parasítica

Probablemente, Rotylenchus sp, es el único
nematodo de la subfamilia hoplolaiminae que presenta una
estrategia de crecimiento parecida a "k". Esto quiere decir a
grandes rasgos que su ciclo de vida es largo y que su tasa de
incremento de la población no es alta. Por ejemplo, ciclo
de vida de R. robustus en condiciones naturales dura entre 14 y
18 meses ó 100 días a una temperatura experimental
constante de 23 °C. En cuanto a su parasitismo, prefiere las
pequeñas raíces y coloniza la región de
elongación o la zona cerca de la punta de la raíz.
Puede alimentarse como ectoparásito o continuamente hasta
por 5 días de diferentes células de un solo sitio.
En presencia de altas poblaciones, plantas como zanahoria,
lechuga, guisantes y clavel muestran lesiones necróticas
sobre las superficies de las raíces, disminución de
biomasa radical y enanismo. Aunque es poco frecuente,
Rotylenchus puede ocasionar al igual que Ditylenchus
síntomas de fasciación (mal deformacion) como ha
sido demostrado en Lilium henryi (VOLCY, 1998).

Diagnóstico

La determinación morfológica y
morfométrica de nematodos fitopatógenos en los
laboratorios de diagnóstico, dado el amplio rango de
especies existentes, resulta complicada. En los últimos
años, se han desarrollado técnicas moleculares,
sobre todo para la identificación de las especies
más importantes, que facilitan enormemente el
diagnóstico, por lo que se están implantando para
su uso rutinario.

Antes de caracterizar un determinado nematodo mediante
un marcador molecular apropiado, es necesario extraer su ADN, por
eso se considera este paso como el más crítico a la
hora de aplicar técnicas moleculares. Se han descrito
distintos métodos de extracción para distintos
géneros.

El protocolo estudiado fue el propuesto por Bulman y
Marshall (1997) para la extracción de ADN de Globodera. El
método se aplicó a nematodos de los géneros
Globodera, Heterodera, Meloidogyne y Rotylenchus probando
diferentes tipos de material de partida: quistes, adultos,
juveniles y huevos. Actualmente el método se está
ensayando con el género Xiphinema

Existe poca información sobre el
diagnóstico molecular del género
Rotylenchus y por el momento no hay ningún
procedimiento basado en técnicas moleculares
específico para este género. Por ello como
método de apoyo al examen morfológico, en
laboratorio se lleva cabo la amplificación de la
región ITS1 (espaciador transcrito interno se refiere a un
pedazo de la no-ARN funcional situado entre estructurales
ribosomal RNA (rRNA) en una transcripción precursor
común) de este género. El método que que se
utiliza, estima el tamaño de la región ITS1 de
Rotylenchus en 900 pb (10-36 cm2)
aproximadamente.

EL programa de PCR (Reacción en cadena de la
polimerasa) utilizado fue el siguiente: 94 ºC 5 min, 35
ciclos de 94 ºC 45 s, 50 ºC 10min, 72 ºC 1 min,
seguidos de una extensión final a 72 ºC durante 12
min. Una alícuota del producto de PCR se resolvió
mediante electroforesis en gel de agarosa al 2 % en tampón
TBE 1X a 100 voltios (Figura 3). Se observa la banda de 900 pb
correspondiente a la región ITS de Rotylenchus. En estos
momentos se está optimizando el proceso para evitar la
presencia de bandas inespecíficas (BULMAN Y MARSHALL,
1997).

Bibliografía

  • 1. BARRIGA, R. 1965. Parasitismo
    de camelias por algunas especies de nematodos. Nematologica.
    11,34

  • 2. BAYER, 2007. Problemas
    biológicos; Rotylenchus sp. [En
    línea]: Bayer CropScienc,
    (http://www.bayercropscience-ca.com/pls/web_bayer/inicio.html,
    Doc. 19 Febrero 2010).

  • 3. BULMAN, S.R. y MARSHALL, J. W.
    1997. Differentiation of Australian potato cyst
    nematode

  • 4. KRALL, E. L. 1985. Root
    parasitic nematodes; family haplolaimidae. 1era edicion.
    Nueva Delhi, India, Oxonian press ltd. p. 250.

  • 5. SFA. 2001. Plagas y
    enfermedades de la lechuga; nematodo espiral. 2da Edicion.
    Madrid, España, Mundi Prensa Libros, S.A. p.
    17.

  • 6. VOLCY, CH. 1998. Nematodos.
    Diversidad de parasitismo en plantas, Medellín –
    Colombia. 2(1):49 – 50.

Anexo

Monografias.com

Figura 1. Fotografia de
Rotylenchus sp

Monografias.com

Figura 2. Diformismo sexual.
Macho: A, B y C; hembra D y E.

Monografias.com

Figura 3. Gel de agarosa al 2%
mostrando el ADN amplificado a partir de adultos de
Rotylenchus. M: Marcador de peso molecular de 100 pb.
Calles 1, 2 y 3: Rotylenchus sp. Calle 4: control
negativo

Los triblásticos triploblásticos son animales (metazoos)
en cuyo desarrollo embrionario temprano se diferencian
tres hojas
embrionarias:ectodermo, endodermo y mesodermo.
Ésta última está ausente en
los diblásticos, cuyo nombre alude a la presencia de
solo dos hojas 

 

 

Autor:

Hernández Caballero, Tonino

TINGO MARIA – PERÚ

2010.

Partes: 1, 2
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