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Anticuerpos policlonales antiinmunoglobulinas de salmón: Herramientas potenciales para diagnóstico


Partes: 1, 2

    Publicación original:
    Arch. med. vet., 1997, vol. 29, n° 1,
    p.133-139. ISSN 0301-732X.
    Reproducción autorizada por:
    Revista Archivos de Medicina Veterinaria

    RESUMEN: A partir de sueros de
    salmón del Atlántico (Salmo salar) se han
    purificado sus inmunoglobulinas (Igs) mediante
    precipitación con sulfato de amonio al 50% de
    saturación, seguido de cromatografía de exclusión por
    tamaño molecular en Sephacryl S-300. La fracción de
    Igs purificadas fue utilizada como inmunógeno para generar
    un anticuerpo policlonal anti-Igs de salmón, el cual fue
    purificado por afinidad usando Sefarosa-proteína G.
    Mediante ensayo
    inmunorradiométrico contra el inmunógeno, la IgG
    anti-Igs de salmón demostró un elevado
    título (a lo menos 1/100.000) específico para el
    antígeno. El anticuerpo generado ofrece la
    posibilidad de detectar respuestas humorales en salmón y
    trucha (reactividad cruzada), con fines diagnósticos o de
    investigación.

    Palabras claves:  anticuerpos
    policlonales,  salmón,  diagnóstico.

    SUMMARY: Polyclonal antibodies anti-salmon
    immunoglobulins; potential tools for diagnosis
    .
    Immunoglobulins (Igs) from sera of Atlantic salmon (Salmo
    salar
    ) were purified with 50% saturated ammonium sulphate
    followed by molecular sieving chromatography using Sephacryl
    S-300. The fraction of purified Igs was used as immunogen to
    generate a polyclonal antibody anti-salmon Igs. This antibody was
    affinity purified in a Sepharose-protein G column. By
    immunoradiometric assay against the immunogen, the rabbit IgG
    anti-salmon Igs showed a high specific titer (at least 1/100.000)
    for the antigen. This reagent offers the possibility of detection
    of salmon or trout (crossreactivity) humoral immune responses,
    both for diagnostic and research purposes.

    Key words:  polyclonal antibodies,
    salmon,  diagnosis.

    INTRODUCCIÓN

    En Chile la década de los 80 representó el
    despegue de la producción de salmón de cultivo,
    situándose en el segundo lugar a nivel mundial. Las
    especies que representan los mayores volúmenes de
    producción las constituyen el salmón del
    Atlántico (Salmo salar), salmón coho
    (Oncorhynchus kisutch) y trucha arco iris (Oncorhynchus
    mykiss
    ). Dentro de los principales factores que ayudaron al
    desarrollo de
    esta industria en
    nuestro país destacó, en sus inicios, una ventajosa
    situación ictiosanitaria (Méndez y Munita,
    1994).

    Sin embargo, el éxito
    productivo, expresado en un aumento del retorno de divisas, se vio
    parcialmente obstaculizado con la aparición de bruscas
    mortalidades de salmón coho en el año 1989,
    derivadas de
    la infección con Piscirickettsia salmonis (Fryer y
    col., 1992). Esta última, actualmente, afecta al
    salmón del Atlántico, al salmón chinoock
    (Oncorhynchus tshawytscha) y trucha arco iris
    (Garcés y col., 1991).

    Para disminuir el daño
    provocado por ésta y otras patologías se han
    desarrollado metodologías diagnósticas que apuntan
    a la detección del agente causal o de anticuerpos
    dirigidos contra éste. Dentro del primer enfoque destacan:
    el cultivo de microorganismos en líneas celulares (Wolf y
    Quimby, 1962; Fijan y col., 1983; Lannan y col., 1984),
    inmunofluorescencia directa o indirecta (Lewis y Allison, 1971;
    Lannan y col., 1991) y ensayo inmunoenzimático (ELISA) de
    captura del patógeno (Adams, 1992). Empleando el segundo
    enfoque: reacciones de aglutinación (Clark y col., 1987),
    inmunoprecipitación en geles (Suran y col., 1967),
    fijación del complemento (Dorson y Torchy, 1979) y ELISA
    (Kaattari y Yui, 1987).

    No obstante la ventajosa sensibilidad ofrecida por los
    ensayos
    inmunométricos, su utilidad se ha
    visto restringida por serias dificultades, a nivel mundial, para
    la adquisición de anticuerpos contra inmunoglobulinas
    (Igs) de salmónidos. No parecería que estas
    dificultades se derivaran de problemas en
    la purificación del antígeno como se discute
    más adelante. Para contribuir al diagnóstico de
    diversas patologías, en este trabajo se
    describe una combinación de procedimientos
    experimentales simples y estándares para la
    producción de anticuerpos policlonales anti-Igs de
    salmón.

    MATERIAL Y MÉTODOS

    OBTENCION DE IG DE SALMON

    Obtención de suero de
    salmón
    . Un grupo de 10
    salmones del Atlántico (Salmo salar) de mar,
    adultos, sanos, de aproximadamente 2 kg, fueron anestesiados por
    inmersión en una solución acuosa de
    benzocaína al 0.001% v/v y sangrados mediante corte
    transversal profundo a nivel de las branquias (arterias aorta
    ventral y coronaria). Los sueros fueron obtenidos por
    procedimientos estándares y congelados a
    -20°C.

    Purificación de Igs de salmón. De
    acuerdo a lo descrito por Havarstein y col. (1988) de los sueros
    de salmón se aislaron sus Igs, inicialmente por medio de
    precipitación con sulfato de amonio al 50% de
    saturación. Las Igs precipitadas fueron primero lavadas
    con sulfato de amonio al 50% de saturación y luego
    redisueltas en tampón fosfato salino (PBS) para su
    posterior diálisis contra PBS, durante toda la noche a
    4°C. Posteriormente, este material fue sometido a
    cromatografía de exclusión por tamaño
    molecular en una columna (120 x 2.5 cm) de Sephacryl S-300,
    eluyendo con PBS. La separación cromatográfica fue
    monitorizada mediante geles de poliacrilamida en presencia de
    dodecilsulfato de sodio (SDS-PAGE), seguida de tinción con
    azul de Coomassie. Aquellas fracciones que mostraron cadenas
    pesadas (H) y livianas (L) fueron
    combinadas.  

    GENERACION DE IGG POLICLONAL ANTI-IG DE
    SALMON

    Inmunización de conejos. Dos conejos
    hembras neozelandesas, de 2 meses de edad fueron inmunizadas con
    500 µg de proteína total, por inoculación, de
    Ig de salmón purificada (mezcla de fracciones
    cromatográficas 29-31). El protocolo
    consistió en una primera inoculación
    subcutánea de 5 ml (2.5 ml de coadyuvante de Freund
    completo y 2.5 ml de solución antigénica suspendida
    en suero fisiológico), una segunda subcutánea de
    igual volumen (2.5 ml
    de coadyuvante de Freund incompleto y 2.5 ml de solución
    antigénica) y una última intraperitoneal de 1 ml
    (0.5 ml de coadyuvante Freund incompleto y 0.5 ml de
    solución antigénica), todas ellas separadas por una
    semana. Las sangrías fueron semanalmente, empezando con
    una preinmune. Los sueros se obtuvieron mediante procedimientos
    estándares.

    Purificación por afinidad de IgG de conejo
    anti-Ig de salmón
    . Alícuotas de 5 ml de suero
    de conejo (tercera sangría) fueron pasadas a través
    de una columna de afinidad de Sefarosa-proteína G. La
    columna, con la mayor parte de las IgG retenidas, fue lavada con
    100 veces su volumen de PBS. Luego ésta fue eluida con
    buffer glicina (glicina 0.1M / NaCl 0.15M, pH 2.6),
    colectando el material eluido sobre buffer Tris 2M pH 8.0. La
    pureza de la IgG de conejo fue analizada mediante SDS-PAGE,
    seguida de tinción con azul de Coomassie.

    Titulación de la IgG anti-Ig de
    salmón
    . Pocillos de placas de cloruro de polivinilo
    (PVC) fueron sensibilizados con 50 µl de una
    solución 20 µg/ml de Ig de salmón purificada.
    Los sitios reactivos remanentes se bloquearon con albúmina
    sérica bovina al 1% p/v en PBS. Diluciones seriadas de la
    IgG anti-Ig de salmón se hicieron reaccionar con la Ig
    adsorbida a la fase sólida. El revelado se efectuó
    con IgG de cabra anti-IgG de conejo, purificada por afinidad y
    radiomarcada con 125I. La radiactividad asociada
    específicamente a los pocillos fue medida en un contador
    gamma.

    Partes: 1, 2

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