Morfologia e função fagocitária de implante esplênico autógeno regenerado em ratos (página 2)

Foram utilizados 32 ratos Wistar albinos, 13 machos e 19 fêmeas. Os animais foram divididos em dois grupos: I - ratos jovens, com peso variando entre 100 g e 150 g (cinco machos e 14 fêmeas); e II - ratos adultos, com peso variando entre 250 g e 300 g (oito machos e cinco fêmeas). Os animais foram colocados em gaiolas apropriadas, máximo de cinco por gaiola, e receberam ração apropriada para ratos e água ad libitum.

Este trabalho foi aprovado pelo Comitê de Ética em Pesquisa Animal do Laboratório de Cirurgia Experimental da Faculdade de Ciências Médicas da Universidade do Estado do Rio de Janeiro. Todos os procedimentos seguiram, rigorosamente, a regulamentação existente sobre experimentação com animais.

Após jejum de seis horas, os animais foram submetidos a anestesia inalatória com halotano, tricotomia abdominal e anti-sepsia com iodopovidine.

Por meio de laparotomia mediana supra-umbilical, procedeu-se à esplenectomia total. O baço foi pesado e seccionado, transversalmente, em cinco fatias, cada uma com cerca de 2 mm de espessura. As secções esplênicas, correspondentes à massa esplênica total, foram implantadas no omento maior, mediante sutura contínua, com fio de ácido poliglicólico 4-0. Os pontos foram dados alternadamente, no omento e no tecido esplênico, para que houvesse interposição de tecido omental entre as fatias esplênicas. A laparorrafia foi realizada com sutura contínua, em dois planos (peritonioaponeurótico e pele), com fio de ácido poliglicólico 3-0.

Após 16 semanas do início do experimento, sob anestesia inalatória com halotano, realizou-se tricotomia cervical e abdominal, e anti-sepsia com iodopovidine. Através de cervicotomia transversa direita, dissecou-se a veia jugular interna, onde foram inoculados 0,2 ml de suspensão contendo Escherichia coli, em concentração bacteriana correspondente a 10⁸ unidades formadoras de colônias (UFC). Depois de 20 minutos da inoculação, os animais foram mortos, com dose letal de halotano, e submetidos a laparotomia mediana, com retirada dos auto-implantes esplênicos que foram pesados e colocados em frascos contendo solução de formalina tamponada a 10%. Processou-se o tecido em soluções crescentes de álcool e xilol; em seguida, ele foi incluído em blocos de parafina e cortado em fatias de 4m de espessura. Foram preparadas lâminas, que foram submetidas à coloração com hematoxilina-eosina (HE) e Gram, e analisadas ao microscópio óptico.

A análise estatística foi realizada com o teste t de Student, com ênfase na comparação da massa de auto-implante esplênico regenerada (percentual de tecido esplênico recuperado após 16 semanas, em relação à massa esplênica implantada) entre animais jovens e adultos de ambos os sexos.

Ocorreu regeneração do auto-implante esplênico em todos os animais. Entre os animais jovens, as médias relativas à massa implantada e à massa regenerada, bem como o percentual de regeneração, foram maiores para machos (p=0,0132, p=0,0010, p=0,595, respectivamente). Para os animais adultos, não foi encontrada diferença entre as médias referentes à massa implantada em machos e fêmeas. Entretanto, fêmeas apresentaram maior massa regenerada e maior percentual de regeneração (p=0,0254, p=0,0152, respectivamente) (Tabela 1).

Na comparação de animais jovens vs. adultos, observou-se que as médias relativas à massa implantada e à massa regenerada foram maiores nos animais adultos (Tabela 2).

A Figura 1 ilustra a visão macroscópica do autoimplante esplênico regenerado em tecido omental, com um dos fragmentos assemelhando-se a um baço normal, de dimensão menor.

Ao exame microscópico, pela coloração com HE, observou-se aspecto morfológico semelhante em todos os animais. O tecido esplênico mostrava as polpas vermelha e branca, com desarranjo arquitetural moderado. Houve redução da polpa branca, porém com a presença de folículos linfóides. Também ocorreu diminuição da zona marginal, não sendo observados centros germinativos. Foram encontrados macrófagos contendo grumos de bactérias, bem como macrófagos contendo pigmento de hemossiderina intracitoplasmáticos, dispostos difusamente pelo parênquima esplênico. Os vasos sangüíneos apresentaram paredes preservadas, sem sinais de vasculite ou trombose. A Figura 2 ilustra a morfologia microscópica de um auto-implante esplênico regenerado, corado com HE.

As Figuras 3 e 4 mostram a morfologia microscópica de macrófagos com grumos bacterianos em seu citoplasma, corados com HE e Gram, respectivamente.

Na atualidade, existem fortes indícios de que dois importantes aspectos relativos ao auto-implante esplênico parecem estar estabelecidos: sua efetiva capacidade de regeneração e o melhor local para sua implantação. Diversos locais para o implante esplênico autógeno têm sido testados - omento maior, tecido subcutâneo, bolsa mesentérica de intestino delgado, músculo, fígado (através da veia porta), pré-peritônio, retroperitônio, etc. Comparando estudos com as mesmas espécies animais e utilizando as mesmas técnicas, implantes intraperitoneais parecem crescer e funcionar melhor que os retroperitoneais e subcutâneos; particularmente, os omentais, com drenagem venosa para a veia porta, apresentam os melhores resultados.^2,7,10,14 Em humanos, os auto-implantes esplênicos têm sido realizados, quase que em sua totalidade, em bolsas no omento maior ^12,14 ou suturadas sobre o omento.⁶ Endossando esses resultados, todos os auto-implantes esplênicos que realizamos em omento maior, levaram à regeneração do tecido esplênico.

O auto-implante esplênico em animais jovens parece propiciar melhor regeneração e maior recuperação da atividade funcional que em adultos.^2,7,8,9,13 Animais jovens, bem como crianças, apresentam sistema imunitário menos desenvolvido que os adultos. Por outro lado, quanto mais jovem o animal, maior a sua capacidade de regeneração tecidual, o que pode explicar a melhor recuperação funcional do implante.^7,9,13

Conquanto a massa de tecido esplênico necessária para gerar função esplênica seja dependente da quantidade de tecido regenerada, não tendo relação com o número de fragmentos implantados, o mínimo de tecido esplênico necessário para que se observe função do baço - massa crítica – parece ser de 25% de um baço normal.^5,6,9. O percentual de regeneração esplênica apresenta correlação direta com a massa implantada, tanto em animais jovens quanto em adultos.⁷ Como os ratos adultos possuem maior peso e, por conseguinte, maior massa esplênica, a quantidade de tecido esplênico implantado foi maior neles do que em jovens. Esse fato poderia explicar o maior percentual esplênico regenerado em animais adultos, embora os resultados obtidos não evidenciem diferença estatisticamente significante. Analisando cada faixa etária, machos jovens e fêmeas adultas apresentaram maiores médias de massa regenerada e de percentual de regeneração. Thalhamer e col.¹⁵ também encontraram regeneração diminuída em fêmeas jovens. Embora não haja relatos na literatura que correlacionem influência hormonal com regeneração de auto-implantes esplênicos, o fato de fêmeas jovens apresentarem menor percentual de regeneração, em comparação com o maior percentual encontrado em fêmeas adultas, pode ser eventualmente explicado pela ausência de regulação hormonal bem desenvolvida em animais jovens. Dessa forma, a maior liberação hormonal, após a maturação sexual das fêmeas, poderia favorecer a regeneração desses implantes.

A observação de aparente redução da polpa branca tem sido verificada em diversos trabalhos experimentais com ratos.^11,15 Por outro lado, Iinuma e col.⁷ e Tavassoli e col.⁸ mostraram regeneração completa da polpa branca após cinco e 16 semanas, respectivamente. As razões para esses comportamentos diversos não são conhecidas, podendo ser, ao menos em parte, devidas à espécie animal e a critérios individuais de avaliação microscópica. A polpa branca, em comparação com a polpa vermelha, demora mais para regenerar-se completamente, talvez porque a neovascularização do auto-implante se faça da periferia (polpa vermelha) para o centro (polpa branca). Existe ainda a possibilidade, segundo Petroianu¹⁶, de as polpas vermelha e branca serem duas estruturas distintas, que estão unidas como se fossem um único órgão, à semelhança do córtex e da medula supra-renal. Dessa forma, a sua regeneração também se faria independente uma da outra.

Os dados da literatura são bastante controversos no que se refere ao tempo necessário para que ocorra a regeneração anatômica do implante esplênico autógeno em ratos. Ele varia entre cinco a oito semanas,^8,9 mas parece que somente após 16 semanas, o auto-implante assemelha-se a um baço normal. Provavelmente, a regeneração funcional também está presente após esse período.⁷

Utilizamos a linhagem selvagem de Escherichia coli AB1157, por ser a bactéria gram-negativa mais bem estudada e por fazer parte da flora intestinal normal, em humanos. É importante ressaltar que a E. coli é responsável por cerca de 12% dos casos de IFPE.¹ As bactérias gram-negativas são também os principais agentes etiológicos de infecções em pacientes esplenectomizados idosos e debilitados por doenças crônicas.

Diversos estudos acerca do auto-implante esplênico têm mostrado que esse procedimento é simples, não se associa a grandes complicações e que sua utilização possibilita a recuperação de algumas funções do baço.^2,7,13,15

Os resultados deste trabalho sugerem que o auto-implante esplênico, no omento maior, em rato, adquire a arquitetura macro e microscópica de um baço normal, de dimensão menor. A presença de pigmento de hemossiderina no interior de macrófagos pode ser atribuída à fagocitose de elementos sangüíneos decorrente de processo hemorrágico, durante a fase inicial da necrose do implante, ou à fagocitose de hemácias senescentes da corrente sangüínea.

Em particular, gostaríamos de enfatizar a presença de grumos intracitoplasmáticos de bactérias gram-negativas, ao redor de seu núcleo, o que comprova a regeneração da função fagocitária do tecido esplênico auto-implantado.

O modelo desenvolvido neste trabalho deverá ser empregado em ratos mais jovens - tanto recém-nascidos, como logo após o desmame - e mais velhos, visando à verificação da função fagocitária dos macrófagos do auto-implante esplênico regenerado em faixas etárias extremas. Da mesma forma, outras espécies animais, assim como outras bactérias, deverão ser testadas para ratificação de nossos achados. O intervalo de tempo decorrido entre o implante autógeno de tecido esplênico e a realização de estudos para comprovação de sua regeneração funcional também deverá ser modificado - reduzido e ampliado - no intuito de compreender melhor essa regeneração.

O auto-implante esplênico, no omento maior, em ratos, adquire a arquitetura macro e microscópica de um baço normal, de dimensão menor e preserva a função fagocitária bacteriana.

Os autores agradecem ao Dr. Carlos Eduardo Rodrigues Caetano e ao Sr. Domingos Peçanha de Oliveira pelo auxílio na anestesia e no acompanhamento dos animais.

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